Плотность формалина: Формальдегида раствор — Щекиноазот

Формальдегида раствор — Щекиноазот

Формалин технический высокой концентрации является безметанольным концентрированным водным раствором формальдегида.

Представляет собой бесцветную прозрачную жидкость с характерным запахом.

Допускается при хранении образование мути или белого осадка, растворимого при температуре не выше 40ºС

Химические и физические свойства продукта соответствуют ТУ 2417-065-05761695-2009 «Формальдегида раствор (формалин технический) высокой концентрации. Технические условия»:

Массовая доля формальдегида в растворе составляет не менее 47%.

Содержание метанола не более 1%.

Доля кислот по массе в пересчёте на муравьиную кислоту – не больше 0,050%.

рН: 3 – 4 ед.рН

Продукт растворим в воде, нерастворим в жирах.

Плотность (при 18 0С) — 1,08 – 1,11 г/см³

Концентрированный малометанольный формалин – это горючая жидкость

Производство

Формалин технический высокой концентрации получают методом окисления метилового спирта на катализаторе «Кристаллическое серебро» кислородом воздуха.

Технология процесса производства формалина включает следующие основные стадии:

• подготовка реакционной смеси;
• подготовка захоложенной воды;
• окисление метанола и охлаждение продуктов реакции;
• абсорбция контактных газов;
• ректификация формалина-сырца;
• стандартизация формалина;
• обезвреживание газовых выбросов;
• подготовка и регенерация катализатора.

Сферы применения

Формальдегид имеет довольно широкий спектр областей применения. Технический формалин высокой концентрации используют в качестве сырья:

• при производстве синтетических смол;
• в органическом синтезе;
• для изготовления пластмасс.

Токсичность/опасность

Раствор формальдегида по степени воздействия на организм человека является высокоопасным веществом, относится ко II классу опасности. Обладает остронаправленным механизмом действия, требующим автоматического контроля содержания в воздухе рабочей зоны, способен вызывать аллергические заболевания в производственных условиях. При местном поражении раствором формальдегида возникает некроз поверхностных тканей. При отравлении парами формалина происходит поражение ЦНС, появляется головная боль, головокружение, в редких случаях – общетоксический шок

Условия хранения

Технический формалин хранят в емкостях, не подверженных коррозии.

Продукт хранят в обогреваемых емкостях, изготовленных из материалов, обеспечивающих сохранение качества продукта от плюс 35 до плюс 40 0С.

 

Формалин плотность — Справочник химика 21

    Какая масса муравьиной кислоты образуется при окислении гидроксидом меди (II) 150 мл формалина (массовая доля формальдегида 36%) Плотность раствора 1,11 г/мл.  [c.43]

    Вычислите количество вещества серебра, которое может выделиться при окислении 400 мл формалина, массовая доля формальдегида в котором 40%. Плотность раствора 1,3 г/мл. Массовая доля выхода серебра от теоретически возможного составляет 0,7.  [c.38]

    Вычислите массу муравьиной кислоты, образовавшейся при окислении 200 мл формалина, массовая доля формальдегида в котором 40%. Плотность раствора 1,3 г/мл. [c.43]

    Фенолсульфокислоту синтезируют в реакторе из кислотоупорной стали сульфированием фенола серной кислотой плотностью 1840 кг/м при 105—110° С в течение 2—3 ч. Полученную фенолсульфокислоту охлаждают до 60—70 °С, загружают в реактор 40%-ный формалин из расчета 60—65 ч. (масс.) формальдегида на 100 ч. (масс.) фенолсульфокислоты и проводят поликонденсацию при 40—50 °С в течение 1—1,5 ч. При этом вследствие избытка формальдегида образуется смола резольного типа. Ее отверждают при 90—100 °С в течение 24 ч, охлаждают, а затем дробят и рассеивают на вибросите, отбирая фракцию с размером зерен 0,4—2 мм. Катионит отмывают водой от кислоты, центрифугируют до остаточной влажности примерно 50% и упаковывают. 

[c.250]

    Сколько литров формальдегида, взятого при н. у., нужно растворить в воде, чтобы получить 2 л 36%)-ного формалина плотностью 1,11 г/мл  [c.79]

    Формальдегид поступает в продажу в виде 30—40%-ного водного раствора — формалина (плотность 1,09 г/сл ), который в случае надобности еще разбавляют водой. [c.120]

    Степень превращения СНзОН в СНаО х = 70%, причем на реакцию (1) расходуется 75% превращенного СНзОН, а на реакцию (2)—25%. Температура в реакторе i = 600 С. Диаметр зерен катализатора d = 2,5 мм. Его плотность Рт= 10680 кг/м . Плотность газа в рабочих условиях рг = 4,12 кг/м . Кинематический коэффициент вязкости газа Vr = 8,07-10 м /с. Продукт — раствор формальдегида в воде (формалин) концентрацией С = 40% (масс.). 

[c.152]

    На величины, приведенные в этой таблице, оказывает влияние наличие метилового спирта в растворе формалина. Поскольку технический формалин содержит 8—10% метилового спирта, эта таблица непригодна для определения содержания формальдегида в растворах технического формалина. Например, раствор, содержащий 37% формальдегида и 10% метилового спирта, будет иметь и плотность, равную 1,09, что соответствует 28%-ному раствору формальдегида в чистой воде. Учитывая все сказанное выше, выход в приведенном выше синтезе будет, вероятно, 64—66% теоретич., а не 86—89% (Скотт, частное сообщение). 

[c.279]

    Сколько весят а) 2 моль формальдегида б) 11,2 л муравьиного альдегида в) 1 л 36%-ного формалина плотностью [c.79]

    Реагент ПБ-5 (ТУ МХП 6-01-730—72)—продукт конденсации анилина до молекулярной массы 400—600 с уротропином в присутствии катализатора (формалина). Уникод ПБ-5 представляет собой липкую жидкость темно-коричневого цвета со слабым запахом аммиака с плотностью 0,9 г/см . Применим до температуры 100 °С и содержание НС1 до 22%. При содержании НС1>22% разлагается. После нейтрализации кислоты в пласте реагент ПБ-5 образует гелеобразный осадок. Поэтому не рекомендуется применять в терригенных коллекторах вследствие возможной закупорки пор пласта. Реагент хорошо растворим в серной, соляной, фосфорной и других минеральных кислотах в воде и щелочах не растворяется. Нетоксичен. Применяется для защиты оборудования от действия соляной кислоты на химических заводах и производствах. 

[c.26]

    Какова процентная концентрация раствора, получающегося при добавлении к 1 л 36%-ного формалина плотностью [c.80]

    Определение на фотоэлектрическом колориметре ФЭК-И оптической плотности эталонных растворов ароматических углеводородов в серной кислоте с формалином. В две кюветы (с рабочей длиной 3 мм) наливают до метки приготовленный по п. 5 раствор формалина в серной кислоте. Кюветы ставят в гнезда правой и левой стороны колориметра и закрывают покровными стеклами. Вращением правого барабана устанавливают на нуль значение шкалы оптической плотности и вращением среднего барабана устанавливают на нуль стрелу гальванометра. Определение производят с применением нейтрального светофильтра. В чистую кювету (с рабочей длиной 3 мм) наливают приготовленную по п. 6 смесь эталонного раствора, содержащего 0,2% ароматических углеводородов с серной кислотой и формалином, и ставят кювету в гнездо правой стороны колориметра на место кюветы с раствором формалина в серной кислоте (кюветы закрывают покровным стеклом). Вращением среднего барабана устанавливают стрелку гальванометра на нуль и отсчитывают по шкале правого барабана величину оптической плотности раствора. 

[c.494]

    Определение оптической плотности раствора испытуемого парафина в серной кислоте с формалином производят в соответствии с п. 7. При испытании твердых парафинов для установления на нуль показаний стрелки гальванометра и шкалы оптической плотности в кюветы наливают раствор формалина в серной кислоте, выдержанный в термостате в соответствии с п. 9. [c.495]

    В IV аленькую фарфоровую часику наливают четыре капли х. ч. сорной кислоты (плотностью 1,84 г/сж ) совершенно бесцветной. Затем прибавляют столько же формалина и 2—3 капли исследуемого продукта.

 [c.170]

    Приборы и реактивы. Микроколбочка. Прибор для восстановления меди. Оксид меди (II). Уголь (порошок). Цинк (гранулированный). Медь (проволока и стружка). Растворы сероводородная вода (свежеприготовленная) крахмала формалина (10%-ный) азотной кислоты (2 н. плотность 1,4 г/см- ) серной кислоты (4 и., 2 н. плотность 1,84 г/см ) хлороводородной кислоты (2 н. плотность 1,19 г/см ) едкого натра или кали (2 н.) аммиака (2 н.) сульфата меди (II) (0,5 н.) хлорида меди (II) (0,5 н.) карбоната натрия (2 н.) иодида калия (0,5 н.) тиосульфата натрия (0,5 н.) сульфита натрия (0,5 н.). [c.198]

    Какой объем формальдегида (в пересчете на и. у.) нужно растворить в воде, чтобы получить 1 л формалина (40-процент-ннй раствор плотностью 1,11)  [c.145]

    Какое количество вещества НСНО содержится в его 30 %-ном водном растворе (формалине) объемом Зли плотностью 1.06 г/мл Ответ 31,8 моль. 

[c.391]

    Уникол ПБ-5 — продукт конденсации анилина в присутствии формалина до молекулярной массы 400—600, Уни ол ПБ-5 представляет собой липкую темно-коричневую жидкость плотностью 1100 кг/м Его широко используют для защиты оборудования от действия НС1 на химических заводах и производствах.  [c.11]

    Какое количество метилового спирта нужно окислить, чтобы растворением полученного формальдегида в воде приготовить 2,5 л формалина (36% растаор, плотность 1100 кг/м ) Назовите основные области применения формалина. [c.96]

    На рис. 6 представлена зависимость величины максимальной светочувствительности, достигаемой во втором созревании, и соответствующей ей оптической плотности вуали от количества введенного в эмульсию аморфного и кристаллического золя, полученного восстановлением окиси серебра формалином. Специальными опытами было показано, что чистый раствор формалина при данной концентрации и в данных условиях не оказывает никакого влияния на фотографические свойства эмульсии. 

[c.184]

    ТСД-9 — фенолформальдегидная смола на основе сложных полимеров. Поставляется в виде жидкости темно-коричневого цвета. Хорошо растворяется в спирте и воде (в соотношении 1 3) в нефтепродуктах не растворяется. Плотность — 1050 — 1100 кг/м, вязкость — 60 — 90 мПа с. Для отверждения используется формалин. [c.631]

    Выполнение работы. 1. Снятие спектра поглощения и выбор длины вол н ы. в делительную воронку помещают 1 мл стандартного раствора спирта в формалине, имеющего наибольшую концентрацию, добавляют по 1 мл растворов метаванадата аммония и 8-гидроксихинолина и 4 мл ацетатного буферного раствора. Перемешивают, добавляют 15 мл бензола и взбалтывают в течение 20 мин. Бензольный слой сливают в другую воронку, взбалтывают 2 мин с 10 мл раствора NaOH, сливают органическую фазу в кювету прибора (/ = 1 см) и измеряют оптическую плотность относительно раствора сравнения (15 мл бензола встряхивают с 10 мл NaOH и бензольный слой помещают в кювету) в области длин волн 300-400 нм через каждые 5-10 нм. Строят кривую светопоглощения в координатах оптическая плотность — длина волны и выбирают длину волны (светофильтр), соответствующую максимуму поглощения. [c.175]

    Анализ исследуемого раствора. Пипеткой отбирают 25 мл кссяедуемого раствора формалина и в мерной колбе вместииостБЮ 100 мл доводят до метки водой. Пробу 1 мл этого раствора пипеткой помещают в делительную воронку, добавляют по 1 мл растворов метаванадата аммония и 8-гидроксихинолина, 4 мл ацетатного буферного раствора и перемешивают. Затем добавляют 15 мл бензола и выполняют те же операции, что и при снятии спектра поглощения (см. п. 1). Измеряют оптическую плотность исследуемого раствора при выбранной длине волны и с помощью градуировочного графика находят массовую долю (%) спирта в формалине. [c.176]

    По экономическим показателям следует отдать преимущество ингибитору ИОМС-1, который представляет собой водный раствор натриевой соли аминометилен-фосфоновой кислоты, получаемой взаимодействием хлористого аммония с формалином и ортофосфорной кислотой в солянокислой среде. Ингибитор ИОМС-1 30%-ный продукт, имеет pH 6,8, плотность 1,3 г/см , предельно допустимая концентрация (ПДК) в воде [c.33]

    Рефрактоденситометрический метод. В некоторых случаях для приближенного определения содержания метанола и формальдегида в растворах типа технического формалина пользуются рефрактоденситометрической методикой. Показатель преломления пв ° определяется при 20,04=0,1 °С с использованием рефрактометров типа Аббе (например, ИРФ-22) или Пульфриха (например, ИРФ-23) с погрешностью, соответственно 2-10 или 4 1 10 . Плотность раствора находят с помощью набора денситометров (ареометров) с погрешностью 2-10 г/мл. Содержание метанола и формальдегида находят с использованием интерполированной таблицы (см. Приложение 2). Расхождение в содержании метанола не превышает 0,5% [270]. [c.126]

    Значительно более эффективно проведение парциальной конденсации воды непосредственным контактом паров формалина с распыленными в воздухе каплями хладагента [22]. Схема экспериментальной стендовой установки с хладагентом смешения дана на рис. 51. Сырье — обезметаноленный формалин с массовым содержанием 33—35%—из емкости 1 поступает в испаритель 2 и в виде паров — в смеситель 3. Сюда же из емкости 4 подается хладагент, предварительно охлажденный в теплообменнике 5 и тонко диспергированный в форсунке 6. В качестве хладагента в принципе могут быть использованы любые химически инертные жидкости. В описываемом варианте применялись малолетучие углеводороды или их смеси, например дизельное топливо (соляровое масло). В смесителе пары формалина смешиваются с мелкими каплями охлажденного углеводорода, на поверхности которых конденсируется вода. Смеситель тангенциально присоединен к сепаратору циклонного типа 7, в котором недо-сконденсировавшиеся пары, обогащенные формальдегидом, отделяются от капель жидкости. Время пребывания формалина в системе смеситель — сепаратор измеряется сотыми долями секунды. Существенно подчеркнуть, что поскольку плотность углеводородов меньше, чем у воды или раствора формальдегида, поверхность водного конденсата в нижней части циклона защищена от нежелательного соприкосновения с паровой фазой пленкой хлад- [c.170]

    Приводится рецепт составной части, содержащий 20 г/л хромовой кислоты, 3,33 г/л янтарной кислоты, 1,67 г/л сукцинамида, 1,5 г/л гидрофильного коллоидного раствора ксантановой смолы, являющейся гетерополисахаридом, приготовленным, из разновидности бактерий Xanthamonas ampestris и имеющей молекулярную массу > 200 ООО. Кроме того, в композицию входит 1 мл формалина, 8,4 г/л оксида цинка и 1 к апля на литр смачивателя, в качестве которого используют неионогенный модифицированный полиэтиленоксид с вязкостью 180 сП и плотностью при 25°С 1,0435 г/см . Этот состав имеет pH 3,65 и хранится в герметичном контейнере. [c.197]

    Компонентами другой композиции являются 500 мл воды, 1,5 г диспергирующего гетерополисахарида, 1 мл формалина и 1 капля смачивателя, которым является неионогенный модифицированный продукт присоединения полиэтоксида, имеющий вязкость 180 сП и плотность при 25°С, равную 1,0435 г/см . Стабильность композиции против осаждения приведена в табл.У Л [c.198]

    Приборы и реактивы. Пробирки. Микроколбочки. Наждачная бумага. Окись меди. Уголь (порошок). Цинк (гранулированный). Медь (проволока и стружка). Сульфит натрия. Лакмусовая бумажка (синяя). Крахмальный клейстер. Сероводородная вода (свежеприготовленная). Формалин (10%-ный). Растворы азотной кислоты (2 и. плотность 1,4 г1см ) серной кислоты (4 н. 2 н. плотность 1,84 г1см») соляной кислоты (2 п., плотность 1,19 г1см ) едкого-натра или кали (2 н.) гидроокиси аммония (2 и.) хлорида меди (0,5 н.) карбоната натрия (2 н.) иодида калия (0,5 н.) тиосульфата натрия (0,5 н.) нитрата серебра (0,1 н.) сульфата меди (0,5 и.). [c.251]

    Для определения примеси метилового спирта в формальдегиде 31] поступают следующим образом. Раствор формалина (37% НСНО) разбавляют водой в 4 раза. В делительную воронку помещают 1 мл полученного раствора, 1 мл 0,1 %-ного раствора Nh5VO3, 1 мл 2,5%-ного раствора 8-оксихинолина в 6%-ной уксусной кислоте и 4 мл ацетатного буферного раствора (рН=4,5). После перемешивания взбалтывают 20 мин с 15 мл бензола. Экстракт взбалтывают 2 мин с 10 мл 1 н. раствора NaOH, слой бензола центрифугируют и измеряют оптическую плотность при 380 нм. Способ позволяет определять не менее 0,05% метилового спирта в формалине. Аналогичный способ [32] предложен для определения 0,02—0,03 мг/мл этилового спирта, 0,01 мг/мл бутиловых или амиловых спиртов.  [c.259]

    К 10 мл сернокислого раствора, содержащего 0,1—4 мг Ni, добавляют одну каплю реагента (смесь 3,75 мл 40%-ного формалина, 3,5 мл гидроксиламина и 3,75 мл воды нагревают до кипения) в присутствии 0,4—1,0 N NaOH. Из.меряют оптическую плотность зелено-желтых растворов. [c.129]

---

Формальдегид (формалин)

Формальдегид (муравьиный альдегид). Вещество (альдегид), хорошо растворимое в воде (формалин). Применяется как гербицид и дезинфектант, обладает сильным антисептическим действием, а также используется в текстильной промышленности, при производстве смол и различных других продуктов. Содержится в строительных материалах как примесь — выделяется из прессованных плит, панелей, мебели, ковровых изделий. В организм попадает вдыханием паров. Поражает органы зрения, легкие и кожу, вызывает дерматит, раздражение дыхательных путей, астму, онкологические и другие заболевания. ПДК в воздухе — 0,05 мг/м3.[ …]

Формалин (водный раствор формальдегида) — прозрачная, бесцветная или слабо-желтого цвета жидкость с едким запахом, сильно раздражающая слизистую оболочку глаз и верхних дыхательных путей. В состав формалина входят формальдегид (около 40%) и метиловый спирт (7—12%). Формалин легко испаряется, поэтому его следует хранить в хорошо закупоренных стеклянных бутылях.[ …]

Формалин (40%-ный раствор формальдегида в воде), ГОСТ 1625—15.[ …]

Формалин, 40% раствор (продажный). Точное содержание формальдегида определяют титрованием, предварительно разбавив формалин до 1% раствора.[ …]

Формалин — прозрачная бесцветная жидкость с резким запахом. Если в формалине нет метилового спирта, то при стоянии, особенно на холоду, формалин становится мутным и ив него выпадает белый хлопьевидный осадок — параформ (полимер формальдегида). Во избежание этого, в 40%-ный товарный формалин вводят зимой 10—14% по объему метилового спирта, летом 7-8%.[ …]

Формальдегид (ФА) — бесцветный газ с резким запахом, плотность — 0,815 г/см3, ТКип. — (-19,0 °С), хорошо растворим в воде; 30—40 %-ный водный раствор называется формалином. Растворы выделяют газообразный формальдегид уже при комнатной температуре. Газообразный формальдегид горит, с воздухом или кислородом образует взрывчатые смеси.[ …]

Формалин анализируют на содержание формальдегида как при поступлении партии формалина от предприятия-изготовителя, так и при загрузке его в реакционный аппарат. От содержания муравьиной кислоты зависит значение pH формалина, которое колеблется от 2,8 до 3,8. На рис. 13 приведена зависимость pH формалина от содержания муравьиной кислоты.[ …]

Формалин технический синтетический (ГОСТ 1625— —54), 1% раствор формалина с известным содержанием формальдегида.[ …]

Формальдегид НСОН, 0,2% раствор. 2,5 мл 40% раствора формалина х. ч. разбавляют в мерной колбе до 500 мл дистиллированной водой. Раствор сохраняют в темном месте; годен к употреблению в течение 2 недель.[ …]

Формальдегид является исходным сырьем при получении синтетических красителей (индиго, розанилин и др.). Как антисептик формалин применяют в сельском хозяйстве, в винокурении, пивоварении, в производстве сахара. [ …]

ФОРМАЛЬДЕГИД (Ф.) — химическое вещество (НСНО), широко используемое в промышленности (при производстве древесностружечных плит, как отделочное средство в текстильной промышленности). Ф. используется также как сильный консервант (для сохранения биологических материалов и бальзамирования трупов). Ф. считается одним из основных продуктов большой химии, его мировое производство измеряется десятками миллионов тонн. В то же время, Ф. — опасное вещество, загрязняющее воду и атмосферу и вызывающее сильные аллергические реакции (слезотечение, кашель, спазмы бронхов). Предполагается кан-церогенность Ф. В атмосферу Ф. попадает при эмиссии из мебели, изготовленной из ДСП, содержится в выхлопных газах автомобилей, в табачном дыме. Водный раствор Ф. называется формалином.[ …]

Формалин — бесцветный водный 30—40%-ный раствор формальдегида с примесью (от 7 до 12%) метанола, с резким раздражающим запахом. Формальдегид легко испаряется из водного раствора даже при комнатной температуре. Токсическое действие на организм человека аналогично действию формальдегида.[ …]

Формалин является весьма важным исходным сырьем для многих отраслей химической промышленности. Продукты конденсации формальдегида с фенолами или мочевиной находят большое Применение в промышленности пластических масс для производства бакелита, резенита и т. п. и в лаковой промышленности для получения альбертоля (клеевого вещества для проклейки бумаги) и других продуктов.[ …]

Формалином называется бесцветный водный раствор формальдегида, обладающий резким запахом. Удельный вес формалина 1,0887—1,0954. В формалине содержится 33—40% формальдегида и 2—12% метанола.[ …]

В формалине, являющемся водным раствором формальдегида (Н.СНО), всегда содержится метиловый спирт (СН3ОН) и небольшое количество органических кислот и эфиров, образующихся из примесей метилового спирта, солей металлов, получающихся от разъедания стенок аппаратов, и минеральных солей, попадающих с водой, взятой для растворения формальдегида. [ …]

В формалине содержится небольшое количество органических кислот (0,05%), эфиров, солей металлов, образующихся при коррозии аппаратуры, и минеральных солей, попавших в формалин с водой для растворения формальдегида.[ …]

Смесь формалина с серной кислотой. Смешивают 1 мл 37%-ного раствора формальдегида со 100 мл х. ч. серной кислоты (пл. 1,84 г/см3).[ …]

Если в формалине есть метиловый спирт, то удельный вес оказывается несколько меньше, чем удельный вес соответствующего раствора формальдегида в воде.[ …]

Получение формалина (рис. 40) начинается с образования спиртовоздушной смеси, которая далее подвергается каталитическому воздействию для получения формальдегида. Метиловый спирт подают из напорного бака / через подогреватель 2 в испаритель 3, заполняя его на высоту 200—350 мм. В нижнюю часть испарителя при помощи вакуума засасывается воздух, очищенный от пыли щелочным раствором метанола в очистителе. Воздух, барбогируя через слой подогретого метанола, насыщается парами спирта, образуя спиртовоздушную смесь. Смесь на тарелках испарителя очищается от высококипящих примесей метанола (воды и кетонов), которые периодически выводятся из системы и используются для приготовления раствора, применяемого для очистки воздуха.[ …]

В медицине формальдегид применяется для дезинфекции и обеззараживания в виде слабого формалина или таблеток параформа, которые при нагревании дают газообразный формальдегид. В медицине же формалин находит применение при производстве препаратов, содержащих формальдегид и его производные, например уротропин.[ …]

Стандартный формалин (ГОСТ 1625—54) содержит 40% формальдегида, 7—12% метилового спирта и очень небольшие количества других соединений, в том числе ацетон и соли железа. Реакция кислая.[ …]

При хранении формалина формальдегид может превращаться в той или иной степени в параформальдегид, выпадающий на дно сосуда в виде белого плотного осадка или остающийся в виде хлопьев во взвешенном состоянии. При хранении на морозе или. наоборот, при высокой температуре в параформальдегид превращается значительная часть формальдегида, и в этом случае формалин имеет вид жидкой студенистой массы. [ …]

Газообразный формальдегид, испаряющийся из формалина, вызывает слезотечение и кашель. При работах по протравливанию наибольшая опасность отравления создается именно от вдыхания формальдегида. Случаев тяжелых отравлений формалином не отмечено.[ …]

Водные растворы формалина, содержащие 0,4% формальдегида, используют для дезинфекции сеялок, уборочных и зерноочистительных машин (путем опрыскивания или протирки), а также мешков и брезентов (путем опрыскивания). На 1 мешок расходуют 0,4—0,5 л раствора, или 1,5 мл 40%-ного формалина.[ …]

Исходный раствор формальдегида. В колбу 200 мл вводят 1 мл 1%-ного раствора формалина, приливают 10 мл воды и добавляют из бюретки 10 мл раствора иода. Затем по каплям прибавляют раствор гидроксида натрия до получения светло-желтого окрашивания. Оставляют на 10 мин, добавляют 2 мл 10%-ной хлороводородной кислоты до полного выделения иода. Содержимое колбы выдерживают 10 мин и оттитровывают раствор тиосульфатом натрия с крахмалом в качестве индикатора. В таких же условиях оттитровывают и контрольный раствор (1 мл 0,1 н. раствора иода соответствует 1,5 мг формальдегида).[ …]

Подогретый 40—50%-ный формалин из сборников его в складе перекачивают центробежным насосом 1 (рис. 121) в мерник 2; отсюда по отсчету его закачивают в куб-испаритель 3, который обогревается паровой рубашкой. В этом кубе создается настолько глубокий вакуум, что формалин кипит при 40—45°. Пары воды с некоторым количеством формальдегида через шлемовый колпак и перекидную трубу направляют для охлаждения и конденсации в трубчатый конденсатор 4. Из него пары и конденсат уходят в середину (по высоте) первой колонны 5 с насадкой из колец. Из верхней части этой колонны пары проходят в конденсатор 6; конденсат поступает в разделитель 6а, а из него по сифону, как флегма, стекает обратно на верхнюю тарелку колонны; верх разделителя соединен с вакуум-насосом для удаления газов.[ …]

Истинное содержание формальдегида вычисляют, принимая во внимание-кислотность формалина. [ …]

Стандартный раствор формальдегида. Из 40% формалина готовят 1% водный раствор и иодометрическим титрованием определяют содержание в нем формальдегида. Соответствующим разбавлением водой готовят стандартные растворы, содержащие 2,0, 0,1 и 0,01 мг формальдегида в 1 мл.[ …]

Стандартный раствор формальдегида № 1 с концентрацией 2 мг/мл готовят из 1% раствора формалина соответствующим разведением.[ …]

Стандартный раствор формальдегида. В колбу емкостью 200 мл вносят 1 мл раствора, приливают 10 мл воды и добавляют из бюретки 10 мл 0,1 н. раствора иода. Затем по каплям наливают 20% раствор ИаОН до появления светло-желтого окрашивания. Спустя 10 мин к раствору добавляют 2 мл 10% раствора НС1 и после полного выделения иода титруют 0,1 н. раствором тиосульфата натрия в присутствии крахмала в качестве индикатора.[ …]

Стандартный раствор формальдегида с содержанием 1 мг/мл. Готовят путем разбавления раствора формалина дистиллированной водой, устойчив длительное время. Рабочие стандартные растворы с содержанием 10 и 1 мкг/мл готовят соответствующим разбавлением исходного раствора дистиллированной водой непосредственно перед употреблением.[ …]

Стандартный раствор формальдегида. Вносят в мерную колбу вместимостью 250 мл 5 мл формалина, доводят водой до метки и определяют содержание формальдегида в этом растворе. Для этого 5 мл раствора помещают в коническую колбу вместимостью 250 мл с притертой пробкой, приливают 20 мл 0,1 н. раствора иода и по каплям вносят 30%-ный раствор гидроксида натрия до появления устойчивой бледно-желтой окраски. Колбу оставляют на 10 мин, затем осторожно добавляют 2,5 мл хлороводородной кислоты (разбавленной 1 : 5), оставляют на 10 мин в темноте и оттитровыва-ют избыток иода 0,1 н. раствором тиосульфата натрия. Когда раствор станет светло-желтым, прибавляют несколько капель крахмала. Предварительно устанавливают количество тиосульфата, расходуемое на титрование 20 мл 0,1 и. раствора иода. По разности количества тиосульфата, израсходованного на контрольное титрование, и избытка иода устанавливают количество иода, которое пошло на окисление формальдегида; 1 мл 0,1 н. раствора иода соответствует 1,5 мг формальдегида. Установив содержание формальдегида в 1 мл раствора, соответствующим разбавлением водой готовят исходный стандартный раствор формальдегида, содержащий 0,1 и 0,01 мг/мл формальдегида. Содержание формальдегида в растворах устанавливают титриметри-чески.[ …]

Перед тем как применять формалин, целесообразно определить в нем содержание формальдегида. Если нет возможности произвести химический анализ, содержание формальдегида определяют по плотности формалина, используя для этого ареометр или взвешивая 1 л формалина с точностью до 10 г.[ …]

Анализ исходного сырья. Формалин анализируют в соответствии с ГОСТ 1625—75. Обязательные для проверки показатели — это содержание формальдегида, метилового спирта и кислот в пересчете на муравьиную.[ …]

При нейтрализации смеси формалина с бутанолом сточная жидкость образуется за счет использования растворов формальдегида и аммиака.[ …]

Для определения количества формальдегида в 1% растворе формалина в колбу емкостью 200 мл вводят 1 мл 1% раствора формалина, приливают 10 мл дистиллированной воды и добавляют из бюретки 10 лг г 0,1 и. раствора иода. Прибавляют по каплям 20% раствор едкого натра до получения устойчивого светло-желтого окрашивания, закрывают колбу пробкой и оставляют на 10 мин. Затем прибавляют 1 мл 10% раствора соляной кислоты до полного выделения иода и титруют 0,1 и. раствором тиосульфата натрия. Индикатор — раствор крахмала — прибавляют, когда титруемый раствор приобретет светло-желтую окраску.[ …]

Количество воды, введенной с формальдегидом, определяется исходя из нормы 759 кг 37%-ного формалина на 1 т смолы; количество реакционной воды рассчитывается из стехиометрических соотношений.[ …]

Исходный стандартный раствор формальдегида. В колбу вносят 1 мл 1%-ного раствора формалина, добавляют 10—15 мл воды, 10 мл 1 М раствора иода и по каплям 20%-ный раствор гидроксида натрия до получения устойчивой светло-желтой окраски. Колбу закрывают пробкой и оставляют на 10 мин. Затем подкисляют 5 мл 10%-ного раствора хлороводородной кислоты и через 10 мин титруют 0,1 М раствором тиосульфата натрия. Когда раствор станет бледно-желтым, прибавляют несколько капель 0,5%-ного раствора крахмала. Предварительно устанавливают объем тиосульфата, расходуемого на титрование 10 мл 0,1 М раствора иода. По разности между объ-емами тиосульфата, израсходованного на контрольное титрование, и избытком иода, не вошедшим в реакцию с формальдегидом, устанавливают количество по/л, израсходованное на окисление формальдегида и содержание формальдегида в растворе, исходя из того, что 1 мл 0,1 М раствора иода соответствует 1,5 мг формальдегида. Стандартный раствор хранят в склянке из темного стекла.[ …]

Метод заключается в извлечении формальдегида из сЛабЫх растворов (сточных вод) путем связывания его с метанолом в метилаль и последующа« гидролизом метилаля до формалина о 405£-н6й концентрацией.[ …]

ГОСТ 1625-2016 Формалин технический. Технические условия

Текст ГОСТ 1625-2016 Формалин технический. Технические условия

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СОВЕТ ПО СТАНДАРТИЗАЦИИ. МЕТРОЛОГИИ И СЕРТИФИКАЦИИ

(МГС)

INTERSTATE COUNCIL FOR STANDARDIZATION. METROLOGY AND CERTIFICATION

{ISC)

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ

СТАНДАРТ

ГОСТ

1625—

2016

ФОРМАЛИН ТЕХНИЧЕСКИЙ

Технические условия

Издание официальное

Москве

Стакдартинформ

2017

ГОСТ 1625—2016

Предисловие

Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стан* дартизации установлены в ГОСТ 1.0—2015 «Межгосударственная система стандартизации. Основные положения» и ГОСТ 1.2—2015 «Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные. правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, обновления и отмены»

Сведения о стандарте

1 РАЗРАБОТАН Федеральным государственным унитарным предприятиям «Всероссийский научно-исследовательский институт стандартизации материалов и технологий» (ФГУП «ВНИИ СМТ») и Публичным акционерным обществом «Метафракс»

2 ВНЕСЕН Межгосударственным техническим комитетом по стандартизации МТК 527 «Химия»

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 25 октября 2016 г. No 92-П)

За принятие проголосовали:

Краткое наименование страны по MK (ИСО 316$) 004—97	Код страны по МК (ИСО 3166) 004—97	Сокращенное наименование национального органа по стандартизации
Беларусь	BY	Госстандарт Республики Беларусь
Грузия	GE	Груэстандарг
Россия	RU	Росстандарг
Таджикистан	TJ	Таджикстандарг

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 20 декабря 2016 г. № 2054-ст межгосударственный стандарт ГОСТ 1625—2016 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 июля 2017 г.

5 ВЗАМЕН ГОСТ 1625—8£

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном информационном указателе «Национальные стандарты», а текст изменений и поправок — в ежемесячном информаци-онном указателе «Национальная стандарты». В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячном информационном указателе «Национальные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет ()

© Стандартинформ. 2017

В Российской Федерации частоящий стандарт не может быть полностью или частично воспроизведен. тиражирован и распространен в качестве официального издания без разрешения Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии

и

ГОСТ 1625—2016

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

ФОРМАЛИН ТЕХНИЧЕСКИЙ Технические условия

Formalin for industrial use. Specifications

Дата введения — 2017—07—01

1 Область применения

Настоящий стандарт распространяется на технический формалин, представляющий собой водный раствор формальдегида, содержащий метанол в качестве стабилизатора.

Технический формалин используют в химической промышленности в качестве сырья для получения синтетических смол, пластических масс, продуктов органического синтеза; в производстве каучука и резины; в качестве ингибитора в металлургической и нефтяной промышленности; в качестве дезинфицирующего средства и антисептика в сельском хозяйстве; в текстильной, кожевенной и бумажной промышленности для обработки материалов с целью повышения их качественных характеристик.

2 Нормативные ссылки

8 настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие межгосударственные стандарты:

ГОСТ 8.579—2002 Государственная система обеспечения единства измерений. Требования к количеству фасованных товарое в упаковках любого вида при их производстве, расфасовке, продаже и импорте

ГОСТ 12.1.004—91 Система стандартов безопасности труда. Пожарная безопасность. Общие требования

ГОСТ 12.1.005—88 Система стандартов безопасности труда. Общие санитаоно-гигиенические требования к воздуху рабочей зоны

ГОСТ 12. 1.007—76 Система стандартов безопасности труда, вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности

ГОСТ 12.1.044—89 (ИСО 4589—84) Система стандартов безопасности труда. Пожароезрывоо* пасность веществ и материалов. Номенклатура показателей и методы их определения

ГОСТ 12.2.003—91 Система стандартов безопасности труда. Оборудование производственное. Общие требования безопасности

ГОСТ 12.3.002—2014 Система стандартов безопасности труда. Процессы производственные. Общие требования безопасности

ГОСТ 12.4.021—75 Система стандартов безопасности труда. Системы вентиляционные. Общие требования

ГОСТ 12.4.066— 79 Система стандартов безопасности труда. Средства индивидуальной защиты дерматологические. Классификация и общие требования

ГОСТ 12.4.121—2015 Система стандартов безопасности труда. Средства индивидуальной защиты органовдыхания. Противогазы фильтрующие. Общие технические условия

ГОСТ 12.4.124—83 Система стандартов безопасности труда. Средства защиты от статического электричества. Общие технические требования

ГОСТ 12.4.137—2001 Обувь специальная с верхом из кожи для защиты от нефти, нефтепродуктов, кислот, щелочей, нетоксичной и взрывоопасной пыли. Технические условия

Издание официальное

1

ГОСТ 1625—2016

ГОСТ 12.4.253—2013 (EN 166:2002) Система стандартов безопасности труда. Средства индивиду* альной защиты глаз. Общие технические требования

ГОСТ 195—77 Реактивы. Натрий сернистокислый. Технические условия

ГОСТ 1770—74 (ИС01042—S3. ИСО 4788—80) Посуда мерная лабораторная стеклянная. Цилиндры. мензурки, колбы, пробирки. Общие технические условия

ГОСТ 3118—77 Реактивы. Кислота соляная. Технические условия ГОСТ 4204—77 Реактивы. Кислота серная. Технические условия ГОСТ 4328—77 Реактивы. Натрия гидроокись. Технические условия

ГОСТ 4919.1—2016 Реактивы и особо чистые вещества. Методы приготовления растворов индикаторов

ГОСТ 5375—79 Сапоги резиновые формовые. Технические условия ГОСТ 5394—89 Обувь из юфти. Общие технические условия

ГОСТ 5445—79 Продукты <оксования химические. Правила приемки и методы отбора проб ГОСТ 6709—72 Вода дистиллированная. Технические условия

ГОСТ 9147—80 Посуда и оборудование лабораторные фарфоровые. Технические условия ГОСТ 10555—2016 Реактивы и особо чистые вещества. Колориметрические методы определения примеси железа

ГОСТ 14192—96 Маркировка грузов

ГОСТ 18300—87 Спирт этиловый ректификованный технический. Технические условия’

ГОСТ 18481—81 Ареометры и цилиндры стеклянные. Общие технические условия ГОСТ 18995.1—73 Продукты химические жидкие. Методы определения плотности ГОСТ 19433—88 Грузы опасные. Классификация и маркировка

ГОСТ 19908—90 Тигли, чгши, стаканы, колбы, воронки, пробирки и наконечники из прозрачного кварцевого стекла. Общие технические условия

ГОСТ 20010—93 Перчатки резиновые технические. Технические условия ГОСТ 21650—76 Средства скрепления тарно-штучных грузов в транспортных пакетах. Общие требования

ГОСТ 24597—81 Пакеты тарно-штучных грузов. Основные параметры и размеры ГОСТ 25336—82 Посуда и оборудование лабораторные стеклянные. Типы, основные параметры и размеры

ГОСТ 25794.1—83 Реактивы. Методы приготовления титрованных растворов для кислотно-основного титрования

ГОСТ 26319—84 Грузы опасные. Упаковка

ГОСТ 26663—85 Пакеты транспортные. Формирование с применением средств пакетирования. Общие технические требования

ГОСТ 27025—86 Реактивь. Общие указания по проведению испытаний ГОСТ 27184—86 Реактивь. Определение остатка после прокаливания

ГОСТ 27574—87 Костюмы женские для защиты от общих производственных загрязнений и механических воздействий. Технические условия

ГОСТ 27575—87 Костюмы мужские для защиты от общих производственных загрязнений и механических воздействий. Технические условия

ГОСТ 29228—91 (ИСО 835-2—81) Посуда лабораторная стеклянная. Пипетки градуированные. Часть 2. Пипетки градуированные без установленного времени ожидания

ГОСТ 29251—91 (ИСО 385-1—84) Посуда лабораторная стеклянная. Бюретки. Часть 1. Общие требования

ГОСТ 30765—2001 Тара транспортная металлическая. Общие технические условия

ГОСТ 31340—2013 Предупредительная маркировка химической продукции. Общие требования

Примечание — При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования — на официальном сайге Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодному информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по выпускам ежемесячного информационного указателя «Национальные стандарты» за текущий год. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

’ В Российской Федерации действует ГОСТ Р 55878—2013 «Спирт этиловый технический гидролизный ректификованный. Технические условия».

2

ГОСТ 1625—2016

3 Технические требования

3.1 Технический формалин должен быть изготовлен в соответствии с требованиями настоящего стандарта по технологическому регламенту, утвержденному в установленном порядке.

3.2 Характеристики

3.2.1 8 зависимости от способа производства и области применения технический формалин вы-пускают двух марок:

— ФМ — стабилизированный метанолом:

. ФБМ — безметанольный.

3.2.2 По физико-химическим показателям технический формалин должен соответствовать требованиям и нормам, указанным в таблице 1.

Таблица 1

Наименование показателя	Норма для марки	Метод амелюа
ФМ	Ф&М
высший сорт	Первый сорт
1 Внештй вил	Бесцветная прозрачная жидкость. Допускается наличие небольшой мути или белого осадка, исчезающего при нагревании не выше 40 *С	По 7. 3
2 Массовая доля формальдегида. %	36.9 — 37.5	36.5 — 37.5	36.5 — 37.5	По 7.4
3 Массовая доля метанола. %.	4.0—8.0	4.0—8.0	Не более 1.0	По 7.5
4 Массовая доля кислот в пересчете на муравьиную кислоту. %. не более	0.02	0.04	0.02	По 7.6
5 Массовая доля железа. %, не белее	0.0001	0.0005	0.0001	По 7.7
6 Массовая доля остатка после прокаливания. %. не более	0.008	0.008	0.008	По 7.8

Примечания

1 По согласованию с потребителем в периоде 15 октября по 15 марта допускается поставлять технический формалин марки ФМ с массовой долей метанола до 10.0 %.

2 Показатели 5. 6 изготовитель определяет по требованию потребителя.

3.2.3 Показатели качества технического формалина, предназначенного для экспорта, должны соответствовать требованиям договора (контракта) с иностранным покупателем.

3.3 Маркировка

3.3.1 Транспортная маркировка — по ГОСТ 14192 с нанесением манипуляционного знака «Герметичная упаковка».

3.3.2 Маркировка, характеризующая транспортную опасность груза, должна соответствовать ГОСТ 19433. правилам перевозки опасных грузов, действующим на соответствующих видах транспорта [1]—{SJ, при поставке на экспорт — международным правилам и соглашениям о перевозке опасных грузов, действующим между государствами — участниками этих соглашений.

3.3.3 Маркировка, характеризующая опасность технического формалина в соответствии с правилами [1): класс опасности 8, наименование груза «ФОРМАЛИН» или «ФОРМАЛЬДЕГИДА РАСТВОР, содержащий не менее 25 % формальдегида», классификационный шифр 8013. номер ООН 2209. аварийная карточка 807. классификационный код С9. код опасности 80.

3.3.4 Маркировка упакованной продукции должна содержать:

• наименование страны предприятия-изготовителя;

— наименование предприятия-изготовителя, его товарный знак, юридический адрес:

— наименование продукта, мазку, сорт;

• номер партии и дату изготовления:

• массу нетто;

— обозначение настоящего стандарта.

3

ГОСТ 1625—2016

Для технического формалина марки ФБМ дополнительно указывают время изготовления партии.

Допускается по согласованию с потребителем не наносить сорт продукции на упаковку при его указании в документе о качества.

3.3.5 Маркировочные данные наносят типографским способом, окраской по трафарету, штампованием или другим способом по ГОСТ 14192.

3.3.6 Предупредительная маркировка — в соответствии с ГОСТ 31340.

3.4 Упаковка

3.4.1 Технический формалин заливают в бочки, фляги, стальные и алюминиевые канистры по ГОСТ 30765 и другим нормативным документам или технической документации на конкретные виды упаковки: в полимерные бочки и канистры по нормативным документам* или технической документации; в контейнеры средней груэоподьемности для массовых грузов типа 31HZ1 по (3) (полимерная емкость в металлическом каркасе).

Вместимость бочек и фляг не должна превышать 450 дм³, а канистр — 60 дм³.

Материал упаковки должен быть устойчив к воздействию формалина.

3.4.2 Упаковка должна соответствовать требованиям ГОСТ 26319. рекомендациям [6]. правилам перевозки опасных грузов, действующим на соответствующих видах транспорта [1]—[5]. [7] и иметь сертификат соответствия упаковки требованиям международных и национальных регламентов по перевозке опасных грузов, выданный в установленном порядке компетентным органом.

3.4.3 Технический формалин заливают в чистую, герметичную, не содержащую остатка упаковку. Степень заполнения упаковки не должна превышать 95 % ее общей вместимости.

3.4.4 Предел допускаемых отрицательных отклонений содержимого нетто от номинального количества технического формалина в упаковке должен соответствовать ГОСТ 8.579.

3.4.5 Технический формалин в потребительской упаковке, по согласованию с потребителем, отгружают пакетами в соответствии с ГОСТ 26663. ГОСТ 21650 и ГОСТ 24597.

4 Требования безопасности

4.1 Технический формалин—горючая жидкость, пары которой при смешении с кислородом воздуха образуют пожаровзрывоопасные смеси. Показатели пожарной опасности технического формалина с массовой долей формальдегида 37,0 % и массовой долей метанола до 10 % следующие:

• температура вспышки в открытом тигле — не менее 92 *С:

• температура воспламенения — не менее 98 ^вС;

— температура самовоспламенения — не менее 426 *С;

• нижний температурный предел распространения пламени — не менее 67 *С;

— концентрационные пределы распространения пламени —10,9 % об. — 59.8 % об.:

• минимальное взрывоопасное содержание кислорода — не более 0.3 % об.

Температура вспышки в закрытом тигле технического формалина с массовой долей формальдегида 37,0 % в зависимости от массовой доли метанола приведена в таблице 2.

Таблица 2

Массовая доля метаиэла. %	Температура вспышки в закрытом титле. °С
1.0	83
4.0	75
8.0	71
10.0	67

Показатели пожароазрывсопасности определены по ГОСТ 12.1.044.

Средства пожаротушения — тонкораспыленная вода, воздушно-механическая пена, порошковые огнетушащие составы.

Пожарная безопасность производства должна обеспечиваться системами противопожарной защиты и оргтехмероприятиями по ГОСТ 12.1.004.

’ В Российской Федерации действует ГОСТ Р 52620—2006 «Тара транспортная полимерная. Общие технические условия».

4

ГОСТ 1625—2016

Защиту оборудования и коммуникаций на участках возможного образования зарядов статического электричества следует проводить а соответствии с ГОСТ 12.4.124.

4.2 Технический формалин обладает резким запахом, при вдыхании вызывает слезотечение, першение в горле, нарушение ритма дыхания. При попадании на кожу вызывает зуд. легкую гиперемию. Впоследствии после воздействия наблюдаются аллергические дерматиты, заболевание ногтей.

Технический формалин содержит опасные вещества — формальдегид и метанол.

Формальдегид является веществом, оказывающим канцерогенное воздействие. По степени воздействия на организм человека формальдегид относится к высокоопасным веществам (2-й класс опасности по ГОСТ 12.1.007). Предельно допустимая концентрация (ПДК) в воздухе рабочей зоны — 0.5 мг/м³ (максимальная разовая)*.

Метанол —• сильный кумулятивный яд. обладающий направленным действием на нервную и сосудистую системы, зрительные нервы, сетчатку глаз.

Метанол по степени воздействия на организм человека относится к умеренно опасным веществам (3-й класс опасности по ГОСТ 12.1007). Предельно допустимая концентрация (ПДК) в воздухе рабочей зоны — 15 мг/м³ (максимальная разовая). 5 мг/м³ (средняя сменная)*.

Контроль за содержанием вреоных веществ в воздухе рабочей зоны осуществляется в соответствии с требованиями ГОСТ 12.1.005.

4.3 Работающие с техничес<им формалином должны быть обеспечены специальной одеждой: специальными костюмами по ГОСТ 27574 или ГОСТ 27575. обувью — ботинками по ГОСТ 5394 или ГОСТ 12.4.137. резиновыми сапогами по ГОСТ 5375. а также другими средствами индивидуальной защиты:

• глаз — закрытыми защитными очками по ГОСТ 12.4.253:

> рук — защитными резиновыми перчатками по ГОСТ 20010. защитными дерматологическими средствами по ГОСТ 12.4.068:

• органов дыхания — противогазами с противогазовым фильтром марки А по ГОСТ 12.4.121.

Допускается использование средств индивидуальной защиты, обеспечивающих безопасные условия труда, по другим нормативным документам.

4.4 В производственных помещениях должны быть предусмотрены следующие меры предосторожности: герметизация оборудования и аппаратов, общеобменная приточно-вытяжная и местная вентиляции е соответствии с требованиями ГОСТ 12.4.021.

4.5 Организация технологического процесса должна быть максимально механизирована и автоматизирована. должна отвечать требованиям ГОСТ 12.2.003 и ГОСТ 12.3.002. Управление технологическим процессом следует обеспечивать дистанционными системами. Прямой контакт рабочих с техническим формалином должен быть исключен.

4.6 Меры первой помощи:

• при ингаляционном воздействии — свежий воздух:

• при попадании внутрь — обильное питье воды: не следует вызывать рвоту;

> при попадании на кожные покровы — смыть проточной водой с мылом;

• при попадании в глаза — немедленно промыть проточкой водой при широко раскрытой глазной щели;

• во всех случаях обратиться за медицинской помощью.

4.7 При разливе продукта — адсорбировать сухой землей, песком или другими негорючими материалами. После этого смыть загрязненную поверхность большим количеством воды и удалить смывы через санитарную систему.

4.8 Работающие с техническим формалином должны проходить предварительные и периодические медицинские осмотры в соответствии с порядком и в сроки, установленные органами здравоохранения.

5 Требования охраны окружающей среды

5.1 В атмосферном воздухе населенных мест максимальная разовая ПДК формальдегида составляет 0.05 мг/м³. средняя суточная ПДК — 0,01 мг/м³. что соответствует 2-му классу опасности. Лимитирующий показатель вредности — рефлекторно-резорбтивный *.

5.2 ПДК формальдегида в воде водных объектов хозяйственно-питьевого и культурно-бытового водопользования — 0.05 мг/дм³ (2-й класс опасности), лимитирующий показатель вредности — санитарно-токсикологический*.

5.3 ПДК формальдегида в воде водных объектов рыбохозяйственного значения — 0.1 мг/дм³ (4-й класс опасности), лимитирующий показатель вредности — токсикологический*.

• Перечень нормативных документов, действующих в Российской Федерации, представлен в приложении А.

5

ГОСТ 1625—2016

5.4 Защита окружающей среды при производстве, транспортировании, хранении и применении технического формалина должна быть обеспечена герметизацией технологического оборудования и транспортной упаковки, устройством отсосов в местах возможных выделений вредных выбросов, обработкой загрязненных сточных вод на очистных сооружениях, улавливанием загрязненных газовых выбросов в абсорбционных установках и другими мерами и мероприятиями, обеспечивающими снижение негативного воздействия на окружающую среду.

6 Правила приемки

6.1 Технический формалин принимают партиями. Партией считают количество продукта, однородного по показателям качества, сопровождаемого одним документом о качестве. При поставке продукта в железнодорожных вагонах-цистернах, контейнерах-цистернах, автомобильных цистернах (далее — в цистернах) партией считают каждую цистерну.

Документ о качестве должен содержать:

• наименование предприятия-изготовителя, его товарный знак и юридический адрес;

— наименование продукта, его марку и сорт;

— номер партии;

• дату изготовления;

• массу нетто;

• результаты анализов:

• гарантийный срок хранения;

• обозначение настоящего стандарта;

• подпись и печать службь контроля качества.

Допускается по согласованию с потребителем в документ о качестве вносить дополнительные данные, включающие информацию о потребителе продукции, массу брутто, массу упаковки и т.п.

6.2 Для проверки соответствия качества технического формалина требованиям настоящего стандарта объем выборки продукта составляет 10 % упаковочных единиц, но не менее пяти. При поставке продукта в цистернах — каждая цистерна.

Допускается у изготовителя отбирать пробу из опломбированного резервуара-хранилища или из потока через 15 мин после начала налива в цистерну.

6.3 При получении неудовлетворительных результатов анализа хотя бы по одному из показателей проводят по нему повторный анализ на удвоенной выборке, взятой от той же партии, или на удвоенном количестве проб из цистерны.

Результаты повторного анализа распространяют на всю партию.

7 Методы анализа

7.1 Отбор проб

Отбор проб для анализа — по ГОСТ 5445 со следующим дополнением: точечные пробы из цистерн и резервуара-хранилища отбирают равными частями с трех уровней: сверху, из середины и снизу. Допускается применять пробоотборник любой конструкции, изготовленный из материала, устойчивого к действию продукта, позволяющего проводить отбор проб на любой глубине и обеспечивающего сохранение свойств отобранной пробы при поднятии пробоотборника.

Точечные пробы из канистр, бутылей, бидонов и бутылок отбирают чистой стеклянной трубкой диаметром 15—18 мм. с оттянутым концом, погружая ее до дна тары. Отбирают одну точечную пробу объемом не менее 100 см³.

Масса средней лабораторной пробы должна быть не менее 1000 см³.

7.2 Общие указания

7.2.1 Общие указания по проведению анализа — по ГОСТ 27025.

7.2.2 Допускается применение других средств измерения с метрологическими характеристиками и оборудования с техническими характеристиками не хуже, а также реактивов по качеству не ниже указанных в настоящем стандарте.

Метрологическое обеспечение используемых средств измерений и испытательного оборудования осуществляют в соответствии с действующим законодательством об обеспечении единства измерений.

Все реактивы, используемые для анализа, должны быть квалификации не ниже ч.д.а.

6

ГОСТ 1625—2016

7.2.3 Допускается применять другие методы анализа, обеспечивающие требуемую точность и достоверность результатов определения. Применяемые методики должны быть аттестованы в установленном порядке.

При разногласиях в оценке качества продукта анализ проводят методами, указанными в настоящем стандарте.

7.2.4 В случае обнаружения небольшой мути или белого осадка при определении внешнего вида продукта пробу следует подогреть дэ температуры не выше 40 *С до исчезновения мути или осадка.

7.2.5 Результаты определения округляют до того количества значащих цифр, которому соответствует норма по данному показателю в таблице 1.

По согласованию с потребителем допускается округлять результаты определения до количества значащих цифр, установленных требованиями договора (контракта).

7.2.6 При выполнении измерений соблюдают следующие условия:

— температура окружающего воздуха — (22 ± 5) °С:

• относительная влажность окружающего воздуха — не более 80 %;

• атмосферное давление — 84—106 к Па / 630—795 мм рт. ст.;

— напряжение электропитания в сети — (220±22) В:

• частота питающей сети — (50 ± 1) Гц.

7.3 Определение внешнего вида

7.3.1 Внешний вид технического формалина определяют визуально. Для этого продукт (примерно 90 см³) помещают в пробирку из бесцветного стекла П1-30-250(270) ХС(ТС) по ГОСТ 25336 и рассматривают в проходящем свете при температуре (22 ± 5) *С. При наличии небольшой мути или белого осадка раствор подогревают до температуры не выше 40 °С и повторно рассматривают в проходящем свете.

7.3.2 Допускается для определения внешнего вида технического формалина марки ФМ применять стеклянный цилиндр для ареометроэ по ГОСТ 18481, используя затем пробу для определения плотности продукта с помощью ареометра.

7.4 Определение массовой доли формальдегида

7.4.1 Сущность метода

Метод заключается в титровании гидроокиси натрия, образовавшейся в результате реакции формальдегида с нейтральным раствором сернистокислого натрия.

7.4.2 Аппаратура, посуда и реактивы

Весы неавтоматического действия с наибольшим пределом взвешивания 200 г и погрешностью ± 0.2 мг.

Бюретка И-2-25-0.1 или М-2-50-0.1 по ГОСТ 29251.

Цилиндр 1-10-2 по ГОСТ 1770.

Цилиндр 1-50-2 по ГОСТ 1770.

Колба П-1-250-29/32 ТС(ТХС) или Кн-1-250-19/26 (24/29) ТС(ТХС) по ГОСТ 25336.

Колба 2-1000-2 по ГОСТ 1770.

Кислота серная по ГОСТ 4204. растворы молярной концентрации с (1/2 H₂SO«) = 0.1 моль/дм³ и с (1/2 HjSOJ = 1 моль/дм³; готовят по ГОСТ 25794.1.

Кислота соляная по ГОСТ 3118. растворы молярной концентрации с (HCI) = 0.1 моль/дм³ и с (НС1) = 1 моль/дм³; готовят по ГССТ 25794.1.

Натрия гидроокись по ГОСТ 4328, раствор молярной концентрации с (NaOH) = 0.1 моль/дм³. приготовленный по ГОСТ 25794.1.

Натрий сернистокислый по ГОСТ 195 или натрий сернистокислый 7-водный, раствор молярной концентрации с (NaS0₃) = 1 моль/дм¹; готовят следующим образом; растворяют (126.0 ± 0.1) г безводного сернистокислого натрия или (252.0 1 0.1) г 7-водного сернистокислого натрия в воде в мерной колбе вместимостью 1000 см³, доводят объем раствора до метки и тщательно перемешивают. Раствор используют в течение 5 сут после приготовления.

Тимолфталеин. спиртовой рас*вор с массовой долей 0.1 %; готовят по ГОСТ 4919.1.

Вода дистиллированная по ГОСТ 6709.

Допускается применение блока автоматического титрования с указанными выше бюретками.

7.4.3 Проведение анализа

От 1.5 до 1.8 г анализируемого гродукта помещают в колбу вместимостью 250 см³ с пришлифованной пробкой, содержащей 10 см³ дистиллированной воды, и взвешивают (результат взвешивания в граммах записывают с точностью до четвертого десятичного знака).

7

ГОСТ 1625—2016

В другую колбу помещают 50 см³ раствора сернистокислого натрия, добавляют 3—4 капли раствора тимолфталеина и нейтрализуют раствором серной или соляной кислоты концентрации 0.1 моль/дм^э до исчезновения голубой окраски или раствором гидроокиси натрия концентрации 0.1 моль/дм³ до появления бледно-голубой окраски.

Нейтральный раствор сер-жстокислого натрия переливают в колбу с навеской продукта, перемешивают в течение 2 мин и титруют раствором серной или соляной кислоты концентрации 1 моль/дм³ до исчезновения голубой окраски. 8 случае использования блока автоматического титрования точку эквивалентности определяют в соответствии с инструкцией по эксплуатации.

7.4.4 Обработка результатов

7.4.4.1 Массовую долю формальдегида X. %, вычисляют по формуле

_w VK 0.03003 • 100

*—S-• <4

где V — объем раствора серной (соляной) кислоты концентрации 1 моль/дм³, израсходованный на титрование, см³;

К — коэффициент поправки к значению молярной концентрации соляной или серной кислоты, установленный по ГОСТ 25794.1. пункт 2.1.3;

0.03003 — массовая концентрация формальдегида, соответствующая молярной концентрации кислоты 1 моль/дм³. г/см³;

ш — масса навески анализируемого продукта, г.

За результат анализа массовой доли формальдегида принимают среднеарифметическое значение результатов двух параллельных определений, абсолютное расхождение между которыми не должно превышать предел повторяемости.

Значение предела повторяемости г для двух результатов параллельных определений приведено в таблице 3.

Таблица 3 — Диапазон измерений, значения предела повторяемости, предела воспроизводимости и показателя точности при доверительной вероятности Р = 0,95

В процентах

Диапазон измерений (массовая доля формальдегида)	Предел повторяемости (абсолютное значение допускаемою расхождения между двумя результатами параллельных определений)г	Предел воспроизводимости (абсолютное значение долу* скасмото расхождение между двумя результатами измерений. полученными е разных лабораториях) й	Показатель точности (границы абсолютной погрешности при вероятности Р*0.95)1Д
От 36.0 до 38,0 включ.	0.2	0.3	0.2

7.5 Определение массовой доли метанола

7.5.1 Сущность метода

Метод основан на определении массовой доли метанола по найденным значениям плотности и массовой доли формальдегида в техническом формалине.

7.5.2 Проведение анализа

Плотность анализируемого продукта марки ФМ определяют по ГОСТ 18995.1 с помощью ареометра с ценой деления шкалы 1,0 кг/м⁵ (0.001 г/см³) или с помощью пикнометра типа ПЖ-2 или ПЖ-3 вместимостью 25 или 50 см³, марки Ф&М — с помощью пикнометра.

7.5.3 Обработка результатов

Массовую долю метанола определяют по таблице 6.1. приведенной в приложении Б.

Допускается массовую долю метанола X,. %, вычислять по формуле

у _ (1,1123 * (X- 37,0) 0,0030] — р ^Л‘ » 0.0025 •

где 1.1123— плотность раствора формальдегида с массовой долей 37.0 %. не содержащего метанол, при температуре 20 °С. г/см³;

8

ГОСТ 1625—2016

X— массовая доля формальдегида в анализируемом формалине, определяемая по 7.4. %;

0.0030 — разность плотностей двух растворов формалина, имеющих одинаковую массовую долю метанола, массовая доля формальдегида которых отличается на 1.0 %, г/см³:

0.0025 — разность плотностей двух растворов формалина, имеющих одинаковую массовую долю формальдегида, массовая доля метанола которых отличается на 1.0 %. г/см³:

р — плотность анализируемого формалина, определяемая по 7.5.2. г/см^э.

За результат анализа принимают среднеарифметическое значение результатов двух параллельных определений, абсолютное расхождение между которыми не должно превышать предел повторяемости. Для технического формалина марш ФМ предел повторяемости равен 0.3 %. для технического формалина марки ФБМ предел повторяемости равен 0.17 %.

Границы абсолютной погрешности при доверительной вероятности Р=0.95 для технического формалина марки ФБМ — ± 0.09 %.

7.6 Определение массовой доли кислот в пересчете на муравьиную кислоту

7.6.1 Сущность метода

Метод основан на титрование кислот в техническом формалине раствором гидроокиси натрия с использованием бромтимолового синего в качестве индикатора.

7.6.2 Аппаратура, посуда и реактивы

Весы неавтоматического действия с наибольшим пределом взвешивания 1500 г и погрешностью ±30 мг.

Бюретка И-2-25-0.1 по ГОСТ 29251.

Колба П-1-250-29/32 ТС(ТХС) или Кн-1-250-19/26 (24/29) ТС(ТХС) ло ГОСТ 25336.

Натрия гидроокись по ГОСТ 4326. раствор молярной концентрации с (NaOH) = 0.1 моль/дм³: готовят по ГОСТ 25794.1.

Спирт этиловый по ГОСТ 18300.

Бромтимоловый синий (индикатор) спиртовой раствор с массовой долей 0.1 %. приготовленный поГОСТ 4919.1.

Допускается применение блока автоматического титрования с указанной выше бюреткой.

7.6.3 Проведение анализа

Примерно 100,0 г (результат взвешивания в граммах записывают с точностью до первого десятичного знака) анализируемого продукта взвешивают в колбе с пришлифованной пробкой. К навеске добавляют четыре капли раствора индикатора и титруют раствором гидроокиси натрия до появления синей окраски. В случае использования блока автоматического титрования точку эквивалентности определяют в соответствии с инструкцией по эксплуатации.

7.6.4 Обработка результатов

7.6.4.1 Массовую долю кислот в пересчете на муравьиную кислоту Х₂, %, вычисляют по формуле

VK 0.0046 • 100

где V — объем раствора гидроокиси натрия концентрации 0.1 моль/дм³. израсходованный на титрование. см³;

К — коэффициент поправки»; значению молярной концентрации гидроокиси натрия, установленный по ГОСТ 25794.1. пункт 2.2.3;

0.0046 — массовая концентрация муравьиной кислоты, соответствующая молярной концентрации гидроокиси натрия 0.1 моль/дм ³. г/см³;

т— масса навески анализируемого продукта, г.

За результат анализа массовой доли кислот принимают среднеарифметическое значение результатов двух параллельных определений, абсолютное расхождение между которыми не должно превышать предел повторяемости

Значение предела повторяемости г для двух результатов параллельных определений приведено в таблице 4.

9

ГОСТ 1625—2016

Т а б л ица 4 —Диапазон измерений, значения предела повторяемости, предела воспроизводимости и показателя точности при доверительной вероятности Р=0.95

В процентах

Диапазон измерений (массооа я доля кислот в пересчете на муравьиную шепоту)	Л реле л повторяемости (абсолютное значение допускаемого расхождения между двумя результатами параллельных определений) г	Предел воспроизводимости (абсолютное значение допускаемого расхождение между двумя результатами измерений, полученными о разных лабораториях) Я	Показатель точности (гранимы абсолютной погрешности при вероятности Р*0.9б) ад
От 0.010 до 0.040 вхлюч.	0.002	0.003	0.002

7.7 Определение массовой доли железа

Массовую долю железа определяют по ГОСТ 10555 2.2′-дипиридкловым методом со следующими дополнениями.

Примерно 10,00 г (результат взвешивания в граммах записывают с точностью до второго десятичного знака) анализируемого продукта взвешивают на весах неавтоматического действия с наибольшим пределом взвешивания 200 г и погрешностью ± 0.2 мг в стакане по ГОСТ 25336 любого типа вместимостью 100 см³ из стекла группы ТХС. К навеске пипеткой типа 31-го или 2-го класса точности по ГОСТ 29228 приливают 2 см³ разбавленной серной кислоты (серную кислоту по ГОСТ 4204 разбавляют дистиллированной водой по ГОСТ 6709 в отношении 1:6 (по объему)] и выпаривают на песчаной бане до появления белых паров. за~ем охлаждают до комнатной температуры. Из приготовленной таким образом пробы готовят анализируемый раствор.

Одновременно таким же образом готовят контрольный раствор, применяя те же количества реактивов (без формалина).

Применяют кюветы с толщиной поглощающего свет слоя 50 мм при измерении оптической плотности растворов на фотоэлектрэколориметре и 10 мм — при измерении на спектрофотометре.

За результат анализа принимают среднеарифметическое значение результатов двух параллельных определений, абсолютное расхождение между которыми не должно превышать предел повторяемости.

Значения предела повторяемости г для двух результатов параллельных определений приведены в таблице 5.

Таблица 5 — Диапазон измерений, значения предела повторяемости, предела воспроизводимости и показателя точности при доверительной вероятности Я=0.95

В процентах

Диапазон измерений	Предел повторяемости (абсолютное значение эолускаемого расхождения между двумя результатами параллельных определений) г	Предел воспроизводимости (абсолютное значение допускаемого расхождения между двумя результатами измерений, полненными о разных лабораториях) R	Показатель точности (границы абсолютной погрешности при вероятности Р»0,вб) ал
От 0.00004 до 0,00010 включ.	0.00001	0.00003	0.00002
Се. 0.00010 до 0.00050 включ.	0.00003	0.00004	0.00003

7.8 Определение массовой доли остатка после прокаливания

Массовую долю остатка после прокаливания определяют по ГОСТ 27184 со следующими дополнениями.

Масса навески анализируемого продукта — примерно 100,0 г (результат взвешивания в граммах записывают с точностью до первого десятичного знака). Для определения применяют фарфоровый тигель №5 по ГОСТ 9147 или кварцевый тигель В-50(80.100) или Н-50(80.100) по ГОСТ 19908. Значения предела повторяемости г для двух результатов параллельных определений приведены в таблице 6.

ю

ГОСТ 1625—2016

Таблица 6 — Диапазон измерений, значения предела повторяемости, предела воспроизводимости и показателя точности при доверительной вероятности Р=0.95

В процентах

Диапазон измерений	Предел повторяемости (абсолютное значение допускаемою расхождения между двумя результатами ларапяепьиых определений) т	Предел воспроизводимости (абсолютное значение допускаемого расхождения между двумя результатами измерений, полученными о разных лабораториях) Я	Показатель точности (границы абсолютной погрешности при вероятности Р*0.95) 1Л
От 0.0010 до 0.0040 вкгьоч.	0.0006	0.0008	0.0006
Се. 0,004 до 0,006 включ.	0.0022	0.003	0.002

8 Транспортирование и хранение

8.1 Технический формалин марки ФМ транспортируют всеми видами транспорта в соответствии с правилами перевозки опасных грузов, действующими на данном виде транспорта [1J—(5]. По железной дороге продукт транспортируют напивом и в упакованном виде поеагонными и контейнерными отправками [1]. {2].

Технический формалин марки ФБМ транспортируют крытым автотранспортом, а также наливом в автоцистернах е соответствии с правилами перевозки опасных грузов, действующими на данном виде транспорта [3].

8.2 Технический формалин марки ФМ транспортируют е железнодорожных вагонах-цистернах, специализированных контейнерах-цистернах (танки-контейнеры типа IMO 1), автоцистернах с котлами из алюминия или нержавеющей стали, или углеродистой стали с антикоррозионным стойким покрытием.

Железнодорожные вагоны-цистерны и специализированные контейнеры-цистерны должны соответствовать требованиям рекомендаций [6), правил перевозки опасных грузов [7] и иметь сертификат соответствия, выданный компетен*ным органом.

Технический формалин марм ФБМ транспортируют е автоцистернах с котлами из алюминиевой или нержавеющей стали.

8.3 Технический формалин заливают е чистые, герметичные, не содержащие остатка цистерны. Степень заполнения цистерн не должна превышать 95 % их общей вместимости.

8.4 Технический формалин хранят в обогреваемых емкостях, изготовленных из материалов, обеспечивающих сохранение качества продукта. Продукт марки ФМ хранят при температуре от 10 °С до 25 °С. продукт марки ФБМ — при температуре от 35°С до 45 °С.

Упакованный продукт марки ом хранят е отапливаемых складских помещениях грузоотправителя, грузополучателя при температуре эт 10°С до 25 °С.

8.5 При транспортировании а хранении технического формалина возможно образование белого осадка или небольшой мути, обусловленной образованием параформальдегида. 8 этом случае продукт перед проведением слиеоналиеных операций должен быть разогрет до температуры не выше 40 °С. без применения открытого огня.

9 Гарантии изготовителя

9.1 Изготовитель гарантирует соответствие качества технического формалина требованиям настоящего стандарта при соблюдении условий транспортирования и хранения.

9.2 Гарантийный срок хранения технического формалина марки ФМ — три месяца со дня изготовления. марки ФБМ — 36 часов.

11

ГОСТ 1625—2016

Приложение А (справочное)

Перечень нормативных документов, действующих в Российской Федерации

1 Гигиенические нормативы ГН 2.2.5.1313-03

Предельно допустимые концентрации (ПДК) вредных веществ в воздухе рабочей зоны

2 Гигиенические нормативы ГН 2.1.6.1338-03

Предельно допустимые концентрации (ПДК) загрязняющих веществ в атмосферном воздухе населенных мест

3 Гигиенические нормативы ГН 2.1.5.1315-03

Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ з воде водных объектов хозяйственно-питьевого и культурно-бытового водопользования

4 Нормативы качества воды водных объектов рыбохозяйственного значения, в том числе нормативы предельно допустимых концентраций вредных веществ в водах водных объектов рыбохозяйственного значения. Утверждены Приказом Росрыболоества от 18.01.2010 № 20

12

Приложение Б (обя затея ьное)

Содержание метанола в растворе формальдегида в зависимости от плотности раствора при температуре 20 ®С Табли ца Б.1

Массовая доля метанола. %	Массовая доля формальдегида. %
36.0	36.1	36 2	363	36.4	36.9	36.6	36.7	363	363
0.0	1.1093	1.1096	1.1099	1.1102	1.1105	1.1108	1.1111	1.1114	1.1117	1.1120
02	1.1088	1.1091	1.1094	1.1097	1.1100	1.1103	1.1106	1.1109	1.1112	1.1115
0.4	1.1083	1.1086	1.1089	1.1092	1.1095	1.1098	1.1101	1.1104	1.1107	1.1110
00	1.1078	1.1081	1.1084	1,1087	1.1090	1.1093	1.1096	1.1099	1.1102	1.1105
00	1.1073	1.1076	1.1079	1.1082	1.1085	1.1088	1.1091	1.1094	1.1097	1.1100
1.0	1.1068	1.1071	1.1074	1.1077	1.1080	1.1083	1.1086	1.1089	1.1092	1.1095
1.2	1.1063	1.1066	1.1069	1.1072	1.1075	1.1078	1.1081	1.1084	1.1087	1.1090
1.4	1.1058	1.1061	1.1064	1.1067	1,1070	1.1073	1.1076	1.1079	1.1082	1.1085
1.6	1.1053	1.1056	1.1059	1.1062	1.1065	1.1068	1.1071	1.1074	1,1077	1.1080
1.8	1.1048	1.1051	1.1054	1.1057	1.1060	1.1063	1.1066	1.1069	1.1072	1.1075
2.0	1.1043	1.1046	1.1049	1.1052	1.1055	1.1058	1.1061	1.1064	1.1067	1.1070
2.2	1.1038	1.1041	1,1044	1.1047	1,1050	1.1053	1.1056	1.1059	1.1062	1.1065
2.4	1.1033	1.1036	1,1039	1.1042	1.1045	1.1048	1.1051	1.1054	1.1057	1.1060
2.6	1,1028	1.1031	1,1034	1.1037	1.1040	1.1043	1.1046	1.1049	1.1052	1.1055
2.8	1.1023	1.1026	1.1029	1.1032	1.1035	1.1038	1.1041	1.1044	1.1047	1.1050
3.0	1.1018	1.1021	1.1024	1.1027	1.1030	1.1033	1.10Э6	1.1039	1.1042	1.1045
3.2	1.1013	1.1016	1.1019	1.1022	1.1025	1.1028	1.1031	1.1034	1.1037	1,1040
3.4	1.1008	1.1011	1.1014	1.1017	1.1020	1.1023	1.1026	1.1029	1.1032	1.1035
3.6	1.1003	1.1006	1.1009	1.1012	1.1015	1.1018	1.1021	1.1024	1.1027	1.1030
3.6	1.0996	1.1001	1.1004	1.1007	1.1010	1.1013	1.1016	1.1019	1.1022	1.1025
4.0	1.0993	1.0996	1.0999	1.1002	1.1005	1.1008	1.1011	1.1014	1.1017	1.1020
4.2	1.0988	1.0991	1.0994	1.0997	1.1000	1.1003	1.1006	1.1009	1.1012	1.1015
4.4	1.0983	1.0986	1.0989	1.0992	1.0995	1.0998	1.1001	1.1004	1.1007	1.1010
4.6	1.0978	1.0981	1.0984	1.0987	1.0990	1.0993	1.0996	1.0999	1.1002	1.1005

ы

ГОСТ 1625—2016

Продолжение таблицы Б. 1

Массомя доля метанола. %	меосоеая доля формальдегиде. %
36 0	36 1	36,2	363	36.4	36.S	36.6	367	364	364
46	1.0973	1.0976	1.0979	1.0982	1.0985	1.0988	1.0991	1,0994	1.0997	1.1000
5.0	1.0966	1.0971	1.0974	1.0977	1.0980	1.0983	1.0966	1,0989	1,0992	1.0995
5.2	1.0963	1.0966	1.0969	1.0972	1.0975	1.0978	1,0981	1.0984	1.0987	1,0990
5 А	1.0958	1.0961	1.0964	1.0967	1.0970	1.0973	1.0976	1.0979	1.0982	1.0985
5.6	1.0953	1.0956	1,0959	1.0962	1.0965	1.0966	1.0971	1.0974	1.0977	1.0980
56	1.0946	1.0951	1.0954	1.0957	1.0960	1.0963	1,0966	1.0969	1.0972	1.0975
6.0	1.0943	1.0946	1.0949	1.0952	1.0955	1.0956	1.0961	1.0964	1.0967	1.0970
60	1.0036	1.0041	1.0044	1.0047	1.0050	1.0053	1.0056	1.0050	1.0962	1.0065
6.4	1.0933	1.0936	1.0939	1.0942	1.0945	1.0946	1.0951	1.0954	1.0957	1.0960
6.6	1.0928	1.0931	1.0934	1.0937	1.0940	1.0943	1.0946	1.0949	1.0952	1.0955
6.8	1.0923	1.0926	1.0929	1.0932	1.0935	1.0938	1.0941	1.0944	1.0947	1.0950
7.0	1.0918	1.0921	1.0924	1.0927	1.0930	1.0933	1.0936	1.0939	1.0942	1.0945
7.2	1.0913	1.0916	1.0919	1.0922	1.0925	1.0928	1.0931	1.0934	1.0937	1.0940
7.4	1.0908	1.0911	1.0914	1.0917	1.0920	1.0923	1.0926	1.0929	1.0932	1.0935
7.6	1.0903	1.0906	1.0909	1.0912	1.0915	1.0918	1.0921	1.0924	1.0927	1.0930
7.8	1.0896	1.0901	1.0904	1.0907	1.0910	1.0913	1.0916	1.0919	1.0922	1.0925
8.0	1.0893	1.0896	1.0899	1.0902	1.0905	1.0908	1.0911	1.0914	1.0917	1.0920
6.2	1.0866	1.0891	1.0894	1.0897	1.0900	1.0903	1.0906	1.0909	1.0912	1.0915
8.4	1.0863	1.0886	1.0889	1.0892	1.0895	1.0898	1.0901	1.0904	1.0907	1.0910
6.6	1.0876	1.0881	1.0884	1.0887	1.0890	1.0893	1.0696	1.0899	1.0902	1.0905
6.6	1.0873	1.0876	1.0879	1.0882	1.0885	1.0888	1.0891	1.0894	1.0897	1.0900
9.0	1.0666	1.0871	1.0874	1.0877	1.0880	1.0863	1.0686	1.0889	1.0892	1.0895
9.2	1.0863	1.0866	1.0869	1.0872	1.0875	1.0878	1.0681	1.0684	1.0887	1.0690
9.4	1.0858	1.0861	1.0864	1.0867	1.0870	1.0873	1.0876	1.0879	1.0882	1.0885
9.6	1.0853	1.0856	1.0859	1.0862	1.0865	1.0868	1.0871	1.0874	1.0877	1.0880
9.8	1.0848	1.0851	1.0854	1.0857	1.0860	1.0863	1.0866	1.0869	1.0872	1.0875
10.0	1.0843	1.0846	1.0849	1.0852	1.0855	1.0858	1.0861	1.0864	1.0867	1.0870
10.2	1.0836	1.0841	1.0844	1.0847	1.0850	1.0853	1.0856	1.0859	1.0862	1.0865
10.4	1.0833	1.0836	1,0839	1.0842	1.0845	1.0848	1.0851	1.0854	1.0857	1.0860
10.6	1.0828	1.0831	1.0834	1.0837	1.0840	1.0843	1.0846	1.0849	1.0852	1.0855
10.6	1.0823	1.0626	1.0829	1.0832	1.0835	1.0838	1.0841	1.0844	1.0847	1.0850
11.0	1.0818	1.0821	1.0824	1.0827	1.0830	1.0833	1.0836	1.0839	1.0842	1.0845

ГОСТ 1625—2016

Продолжение таблицы Б. 1

массовая доля метанола, %	Массовая доля формальдегида. %
Э7.0	ЭМ	37.2	373	37.*	37.5	37.6	37.7	Э7.а	376	за л
0,0	1.1123	1.1126	1.1129	1.1132	1.1135	1.1138	1.1141	1,1144	1.1147	1.1150	1.1153
0.2	1.1118	1.1121	1.1124	1.1127	1.1130	1.1133	1.1136	1.1139	1.1142	1.1145	1.1148
0.4	1.1113	1.1116	1.1119	1.1122	1.1125	1.1128	1.1131	1.1134	1.1137	1,1140	1.1143
0.6	1.1106	1.1111	1.1114	1.1117	1.1120	1.1123	1.1126	1.1129	1.1132	1.1135	1.1138
0.6	1.1103	1.1106	1.1109	1.1112	1.1115	1.1118	1.1121	1.1124	1.1127	1.1130	1.1133
1.0	1.1096	1.1101	1.1104	1.1107	1.1110	1.1113	1,1116	1.1119	1.1122	1.1125	1.1128
1.2	1.1093	1.1096	1.1099	1.1102	1.1105	1.1108	1.1111	1.1114	1.1117	1.1120	1.1123
1.4	1.1088	1.1091	1.1094	1.1097	1.1100	1.1103	1.1106	1.1109	1.1112	1.1115	1.1118
1.0	1.1083	1.1086	1.1069	1,1092	1.1095	1.1096	1,1101	1,1104	1.1107	1.1110	1.1113
1.6	1,1078	1.1081	1.1084	1.1087	1.1090	1.1093	1.1096	1.1099	1.1102	1.1105	1.1108
2.0	1.1073	1.Ю76	1.1079	1.1082	1.1085	1.1068	1.1091	1.1094	1.1097	1.1100	1.1103
2.2	1.1068	1.1071	1.1074	1.1077	1.1080	1.1083	1.1086	1,1089	1,1092	1.1095	1.1098
2.4	1.1063	1.1066	1.1069	1.1072	1.1075	1.1078	1.1081	1.1084	1.1087	1.1090	1.1093
2.6	1.1058	1.1061	1.1064	1.1067	1.1070	1.1073	1.1076	1.1079	1.1082	1.1085	1.1086
2.6	1.1053	1.1056	1.1059	1.1062	1.1065	1.1068	1.1071	1.1074	1.1077	1.1080	1.1083
3.0	1.1048	1.1051	1.1054	1.1057	1.1080	1.1063	1.1066	1.1069	1.1072	1.1075	1.1078
3.2	1.1043	1.1046	1,1049	1.1052	1.1055	1.1058	1.1061	1.1064	1.1067	1.1070	1.1073
3.4	1.1038	1.1041	1.1044	1.1047	1.1050	1.1053	1.1056	1.1059	1.1062	1.1065	1,1068
3.6	1.1033	1.ЮЭ6	1.1039	1.1042	1.1045	1.1048	1.1051	1.1054	1.1057	1.1060	1.1063
36	1.1028	1.1031	1.1034	1.1037	1.1040	1.1043	1.1046	1.1049	1.1052	1.1055	1.1058
4.0	1.1023	1.1026	1.1029	1.1032	1.1035	1.1038	1.1041	1.1044	1.1047	1.1050	1.1053
4 2	1.1018	1.1021	1.1024	1.1027	1.ЮЭ0	1.1033	1.1036	1.1039	1.1042	1.1045	1.1046
4.4	1.1013	1.1016	1.1019	1.1022	1.1025	1.1028	1.1031	1.1034	1.1037	1.1040	1.1043
4.6	1.1008	1.1011	1.1014	1.1017	1.1020	1.1023	1.1026	1.1029	1.1032	1.1035	1.1038
46	1.1003	1.1006	1.1009	1.1012	1.1015	1.1018	1.1021	1.1024	1.1027	1.1030	1.1033
5.0	1.0998	1.1001	1.1004	1.1007	1.1010	1.1013	1.1016	1.1019	1.1022	1.1025	1.1028
52	1.0993	1.0996	1.0999	1.1002	1.1005	1.1008	1.1011	1.1014	1.1017	1.1020	1.1023
54	1.0968	1.0991	1.0994	1.0997	1.1000	1.1003	1.1006	1.1009	1.1012	1.1015	1.1018
5.6	1.0983	1.0986	1.0989	1.0992	1.0995	1.0998	1.1001	1.1004	1.1007	1.1010	1.1013
5.6	1.0978	1.0981	1.0984	1.0987	1.0990	1.0993	1.0996	1.0999	1.1002	1.1005	1.1008
6.0	1.0973	1.0976	1.0979	1.0962	1.0985	1,0986	1.0991	1.0994	1.0997	1.1000	1.1003

ГОСТ 1625—2016

о

Окончание таблицы 6. 1

Массовая доля метанола. %	мвотезя доля формальдегида. %
37.0	37.1	37.2	37.3	37,*	Э7Л	Э7.в	37.7	37,8	37,3	38.0
6,2	1,0968	1.0971	1.0974	1.0977	1,0980	1,0963	1.0986	1.0989	1.0992	1.0995	1,0998
6.4	1.0963	1.0966	1.0969	1.0972	1.0975	1.0978	1.0981	1.0984	1.0987	1.0990	1.0993
6.6	1.0958	1.0961	1.0964	1,0967	1.0970	1.0973	1.0976	1.0979	1.0982	1.0985	1.0988
6.6	1.0953	1.0956	1.0959	1.0962	1.0965	1.0968	1.0971	1.0974	1.0977	1.0980	1.0963
7.0	1.0948	1.0951	1.0954	1.0957	1.0960	1.0963	1.0966	1.0969	1.0972	1.0975	1.0978
7.2	1.0943	1.0946	1.0949	1.0952	1.0955	1.0958	1.0961	1.0964	1.0967	1.0970	1.0973
7.4	1.0938	1.0941	1.0944	1.0947	1.0950	1.0953	1.0956	1.0959	1.0962	1.0965	1.0968
7.6	1.0933	1.0936	1.0939	1.0942	1.0945	1.0948	1.0951	1.0954	1.0957	1.0960	1.0963
7.8	1.0928	1.0931	1.0934	1.0937	1.0940	1.0943	1.0946	1.0949	1.0952	1.0955	1.0958
8.0	1.0923	1.0926	1.0929	1.0932	1.0935	1.0938	1.0941	1.0944	1.0947	1.0950	1.0953
8.2	1.0918	1.0921	1.0924	1.0927	1.0930	1.0933	1.0936	1.0939	1.0942	1.0945	1.0948
8.4	1.0913	1.0916	1.0919	1.0922	1.0925	1,0928	1.0931	1.0934	1.0937	1.0940	1.0943
8.6	1.0908	10911	1.0914	1.0917	1.0920	1.0923	1.0926	1.0929	1.0932	1.0935	1.0938
8.8	1.0903	1.0906	1.0909	1.0912	1.0915	1.0918	1.0921	1.0924	1.0927	1.0930	1.0933
9.0	1.0898	1.0901	1.0904	1.0907	1.0910	1.0913	1.0916	1.0919	1.0922	1.0925	10928
9.2	1.0893	1.0896	1.0899	1.0902	1.0905	1.0908	1.0911	1.0914	1.0917	1.0920	1.0923
9.4	1.0888	1.0891	1.0894	1.0897	1.0900	1.0903	1.0906	1.0909	1.0912	1.0915	1.0918
9.6	1.0883	1.0886	1.0889	1.0892	1.0895	1.0898	1.0901	1.0904	1.0907	1.0910	1.0913
9.8	1.0878	1.0881	1.0884	1.0887	1.0890	1.0893	1.0896	1.0699	1.0902	1.0905	1.0908
10.0	1.0873	1.0876	1.0879	1.0862	1.0885	1.0888	1.0891	1.0894	1.0897	1.0900	1.0903
10.2	1.0868	1.0871	1.0874	1.0877	1.0880	1.0883	1.0886	1.0889	1.0892	1.0895	1.0898
10.4	1.0863	1.0866	1.0869	1.0872	1.0875	1.0878	1.0881	1.0884	1.0887	1.0890	1.0893
10.6	1.0858	1.0861	1.0864	1.0867	1.0870	1.0873	1.0876	1.0879	1.0882	1.0885	1.0888
10.8	1.0853	1.0856	1.0859	1.0862	1.0865	1.0868	1,0871	1.0874	1.0877	1.0880	1.0883
11.0	1.0848	1.0851	1.0854	1.0857	1.0860	1.0863	1.0866	1.0869	1.0872	1.0875	1.0878

ГОСТ 1625—2016

ГОСТ 1625—2016

Библиография

(1] Правила перевозки опасных грузов по железным дорогам. Утв. Советом по железнодорожному транспорту государств — участников Содружества. Протокол от 05.04.1996 № 15

(2] Правила перевозки жидких грузов наливом в вагонах-цистернах и вагонах бункерного типа для перевозки не-фтебигума. Утв. Советом по желетнодорожному транспорту государств — участников Содружества. Протокол от 21—22 мая 2009 г. № 50

(3] Европейское соглашение о международной дорожной перевозке опасных грузов (ДОПОГ/ARD) 2015 г. Приложения А и В

(4] Международный морской кодекс то опасным грузам (кодекс ММОГ). Международная морская организация, редакция 2012 г.

(5] Технические инструкции по безопасной перевозке опасных грузов по воздуху ИКАОЛСАО (Международная организация гражданской авиации), издание 2015—2016 гг.

(6] Рекомендации по перевозке опасных грузов. Типовые правила ООН. 18-е пересмотр, иод. НЬю-Йорк и Женева.2013

(7] СМГС — Соглашение о международном железнодорожном грузовом сообщении. Приложение 2 (опасные грузы), 2015

17

ГОСТ 1625—2016

УДК 661.727.1:006.354 МКС 71.080.80

Ключевые слова: технический формалин, марки, технические требования, безопасность, упаковка, маркировка. транспортирование.хранение

Редактор И.А. Косорукое Технический редактор В.Н. Прусакова Корректор EJJ. Дульнева Компьютерная верстка А.С. Тыртышного

Сдано е набор 23.12.2016. Подписано а печать 19.01.2017, Формат 60 * 64 Гарнитура Ариал. Усл.леч. л. 2.32. Уч.-иэд. л. 2.10. Тираж 43 эм. Зак 114.

Подготовлено на осюае электронной версии, предоставленной раэработчиком стандарта

Издано и отпечатано во ФГУП «СТАНДАРТИНФОРМ*. 123665 Москва. Гранатный пер.. 4.

Нейроглиальный комплекс префронтальной коры мозга мужчин и женщин в старческом возрасте | Боголепова

1. Агапов ПА., Боголепова И.Н., Малофеева Л.И. Изменение размера нейронов и плотности нейронов и глии поля 7 коры мозга женщин в процессе старения. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2017; 5-2:274-80

2. Боголепова И.Н. Морфологические особенности индивидуального строения мозга человека. Журнал невропатологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 1982; 82(7):972

3. Боголепова И.Н. Нейроглиальные взаимоотношения как один из показателей индивидуальной вариабельности мозга человека. Морфология. 1993; 105(7-8):21-2

4. Боголепова И.Н. Строение и развитие гиппокампа человека в пренатальном онтогенезе. Журнал невропатологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 1970; 70 (6): 857-63

5. Боголепова И.Н. Цитоархитектонические критерии индивидуальной вариабельности мозга человека. Морфология. 2000; 117(3):24

6. Боголепова И.Н., Малофеева Л.И. Основные принципы структурной асимметрии корковых формаций мозга человека. Uspekhi fiziologicheskikh nauk. 2004; 35(3):3-19

7. Горяйнов С.А., Процкий С.В., Охотин В.Е., Павлова Г.В., Ревищин А.В., Потапов АА. О роли астроглии в головном мозге в норме и патологии. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2013; 7(7):45-52

8. Мыцик А.В., Степанов С.С., Ларионов П.М., Акулинин ВА. Актуальные проблемы изучения структурно-функционального состояния нейронов коры большого мозга человека в постишемическом периоде. Журнал анатомии и гистопатологии. 2012; 1(1):37-47

9. Салмина А.Б., Окунева О.С., Таранушенко Т.Е., Фурсов АА., Прокопенко С.В., Михуткина С.В., Малиновская НА., Тагаева ГА. Роль ней-рон-астроглиальных взаимодействий в дизре-гуляции энергетического метаболизма при ишемическом перинатальном поражении головного мозга. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2008; 2 (3):44-51

10. Цитоархитектоника коры большого мозга человека. Под ред. Саркисова С.А., Филимонова И.Н., Преображенской Н.С. Москва; 1949: 449 [Tsitoarkhitektonika kory bol’shogo mozga cheloveka. Pod red. Sarkisova S.A., Filimonova I.N., Preobrazhenskoi N.S. Moscow; 1949: 449] (in Russian).

11. Alexander WH, Vassena E, Deraeve J, Langford ZD. Integrative Modeling of Prefrontal Cortex. Journal of Cognitive Neuroscience. 2017 Oct;29(10):1674-83. doi: 10.1162/jocn_a_01138

12. Bilkei-Gorzo A, Albayram O, Ativie F, Chasan S, Zimmer T, Bach K, et al. Cannabinoid 1 receptor signaling on GABAergic neurons influences astrocytes in the ageing brain. Biagini G, editor. PLOS ONE. 2018 Aug i6;i3(8):e0202566. doi: io.i37i/journal.pone.0202566

13. Braver TS, Bongiolatti SR. The Role of Frontopolar Cortex in Subgoal Processing during Working Memory. NeuroImage. 2002 Mar;i5(3):523—36. doi: I0.i006/nimg.200i.i0i9

14. Cerbai F, Lana D, Nosi D, Petkova-Kirova P, Zecchi S, Brothers HM, et al. The Neuron-Astrocyte-Microglia Triad in Normal Brain Ageing and in a Model of Neuroinflammation in the Rat Hippocampus. Norris CM, editor. PLoS ONE. 2012 Sep i8;7(9):e45250. doi: 10.1371/journal.pone.0045250

15. Fabricius K, Jacobsen JS, Pakkenberg B. Effect of age on neocortical brain cells in 90+ year old human females—a cell counting study. Neurobiology of Aging. 2013 Jan;34(1):91-9. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2012.06.009

16. Fields Rd. The Other Half of the Brain. Scientific American. 2004 Apr;290(4):54-61. doi: 10.1038/scientificamerican0404-54

17. Gilman JP, Medalla M, Luebke JI. Area-specific features of pyramidal neurons — a comparative study in mouse and rhesus monkey. Cereb. Cortex. 2017 Mar 1;27(з):2078-94. doi: 10.1093/cercor/bhw062

18. Harry GJ. Microglia during development and aging. Pharmacology & Therapeutics. 2013 Sep;139(3):313-26. doi: 10.1016/j.pharmthera.2013.04.013

19. Hayakawa N, Kato H, Araki T. Age-related changes of astorocytes, oligodendrocytes and microglia in the mouse hippocampal CA1 sector. Mechanisms of Ageing and Development. 2007 Apr;128(4):311-6. doi: 10.1016/j.mad.2007.01.005

20. Hwang IK, Yoo K-Y, Kim DS, Kang T-C, Lee B-H, Kim Y-S, et al. Chronological Distribution of Rip Immunoreactivity in the Gerbil Hippocampus During Normal Aging. Neurochemical Research. 2006 Aug 22;31(9):1119-25. doi: 10.1007/s11064-006-9129-4

21. Koechlin E, Hyafil A. Anterior Prefrontal Function and the Limits of Human Decision-Making. Science. 2007 Oct 26;318(5850):594-8. doi: 10.1126/science.1142995

22. Luria AR. Neuropsychology and its importance for medical and for behavioral sciences. Revista del Hospital Psiquiatrico de la Habana. 1973; 14(3): 437-447.

23. Mavroudis IA, Manani MG, Petrides F, Dados D, Ciobica A, Padurariu M, et al. Original article Age-related dendritic and spinal alterations of pyramidal cells of the human visual cortex. Folia Neuropathologica. 2015;53(2):100-10. doi: 10.5114/fn.2015.52406

24. Molofsky AV, Kelley KW, Tsai H-H, Redmond SA, Chang SM, Madireddy L, et al. Astrocyte-encoded positional cues maintain sensorimotor circuit integrity. Nature. 2014 Apr 28;509(7499):189-94. doi: 10.1038/nature13161

25. Oliveira-Pinto AV, Andrade-Moraes CH, Oliveira LM, Parente-Bruno DR, Santos RM, Coutinho RA, et al. Do age and sex impact on the absolute cell numbers of human brain regions? Brain Structure and Function. 2015 Sep 28;221(7):3547-59. doi: 10.1007/s00429-015-1118-4

26. Pelvig Dp, Pakkenberg H, Stark AK, Pakkenberg B. Neocortical glial cell numbers in human brains. Neurobiology of Aging. 2008 Nov;29(11):1754-62. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2007.04.013

27. Peters A, Kemper T. A review of the structural alterations in the cerebral hemispheres of the aging rhesus monkey. Neurobiology of Aging. 2012 Oct;33(10):2357-72. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2011.11.015

28. Salminen A, Ojala J, Kaarniranta K, Haapasalo A, Hiltunen M, Soininen H. Astrocytes in the aging brain express characteristics of senescence-associated secretory phenotype. European Journal of Neuroscience. 2011 Jun 7;34(1):3-11. doi: 10.1111/j.1460-9568.2011.07738.x

29. Shallice T, Cipolotti L. The Prefrontal Cortex and Neurological Impairments of Active Thought. Annual Review of Psychology. 2018 Jan 4;69(1):157-80. doi: 10.1146/annurev-psych-010416-044123

30. Shimeda Y, Hirotani Y, Akimoto Y, Shindou K, Ijiri Y, Nishihori T, et al. Protective Effects of Capsaicin against Cisplatin-Induced Nephrotoxicity in Rats. Biological & Pharmaceutical Bulletin. 2005;28(9):1635-8. doi: 10.1248/bpb.28.1635

31. Watanabe M. Emotional and Motivational Functions of the Prefrontal Cortex. Brain Nerve. 2016; 68(11):1291-9. doi: 10.11477/mf.1416200593

32. Yang Y, Raine A. Prefrontal structural and functional brain imaging findings in antisocial, violent, and psychopathic individuals: A metaanalysis. Psychiatry Research: Neuroimaging. 2009 Nov;174(2):81-8. doi: 10.1016/j.pscychresns.2009.03.012

Четыре рекомендации по фумигации | Oтдел развития инкубаторий | Petersime

Фумигация формальдегидом широко применяется в инкубаториях для дезинфекции яиц примерно с 1908 года. Сегодня практически во всех инкубаториях этот метод применяют для исключения убытков, обусловленных микробным заражением инкубационных яиц.

Ниже даны рекомендации по фумигации, основанные на результатах многочисленных наблюдений за инкубаториями по всему миру советДжейсонаКормика:

• Невозможно фумигировать грязь.

Формальдегид применяется только для дезинфекции поверхности, соответственно, важно уничтожить микроорганизмы до того, как они проникнут в скорлупу яиц. Кроме того, важно, чтобы скорлупа была чистой, поскольку фумигант не дезинфицирует поверхность под слоем грязи.

• Необходимо строго контролировать концентрацию формальдегида

Технологические показатели дезинфекции устанавливаются поставщиком. Производители тратят огромные средства на исследование оптимальных условий использования своих товаров, поэтому увеличение дозы не имеет смысла и может быть опасно.

• Фумигация в инкубатории должна быть проведена как можно раньше

Как только вредные микроорганизмы проникают в скорлупу, они за несколько минут достигают мембраны и не подвергаются воздействию фумиганта. Таким образом, необходимо провести фумигацию яиц как можно раньше, лучше сразу после поступления яиц в инкубаторий.
Нельзя проводить фумигацию после работы с яйцом, прямо перед закладкой. Во-первых, бактерии, вероятнее всего, уже проникли в яйцо, а во-вторых, эмбрионы на ранних стадиях очень чувствительны к некоторым дезинфицирующим средствам, таким как формалин. Остатки формалина на яйце во время закладки могут привести к гибели эмбриона.

• Важен хороший поток воздуха

Во время фумигации ключевое значение имеет поток воздуха. Основная цель — как можно лучше покрыть всю поверхность инкубационного яйца. Для фумигации следует использовать инкубационные лотки и инкубационные или транспортировочные тележки, поскольку они обеспечивают оптимальное прохождение воздушного потока.

Нельзя фумигировать плотно упакованные яйца. В таком случае обработка фумигантом не будет однородной для всех яиц. Таким образом, при необходимости распаковать яйца в инкубатории фумигацию следует провести после распаковки, но до закладки.

Эти четыре ключевых правила помогут предотвратить заражение яиц и раннюю смертность из-за фумигации. Для получения более подробной информации о фумигации и других передовых практиках для своего инкубатория отправьте сообщение на .(JavaScript must be enabled to view this email address), чтобы принять участие в следующем курсе обучения по вопросам управления инкубаторием, и уточните у своего регионального менеджера по продажам даты предстоящего семинара Operational Excellence Days в своем регионе.

Гистологическое исследование. Что это такое?

Часть 1. Отбор и фиксация проб

Автор: Ганкина Ю. В., ветеринарный врач-патолог. Ветеринарная клиника неврологии, травматологии и интенсивной терапии, г. Санкт-Петербург.

Думаю, многие примерно представляют, что гистология – это наука о тканях (все врачи проходили курс гистологии в вузах, но было это, чаще всего, достаточно давно). Соответственно, когда доктор отправляет какой-то материал на гистологическое исследование, он понимает, что исследовать будут ткани, которые он отправил. Казалось бы, все и так понятно, но тем не менее возникает множество вопросов как от направляющих материал врачей-клиницистов, так и от врачей-патологов. 
Зачем писать направление? Что там писать (почему так много, неужели патологи сами не увидят в микроскопе, что я прислал)? Зачем столько формалина? Почему не подходит формалин с белым осадком, который у нас хранился с времен основания клиники? Почему не спирт? Почему так долго? Для чего нужны дополнительные окраски? Почему вы не делаете электронную микроскопию, хотя у вас есть компьютер? И многое, многое другое. 
В серии своих статей я постараюсь ответить на некоторые вопросы врачей-клиницистов, объяснить, что же происходит с материалом после попадания в недра лаборатории и что патологи пытаются в нем рассмотреть. 

Что оправляется на гистологическое исследование?

Первое, что приходит в голову, когда заходит речь о гистологии, – это опухоли (любые опухоли: кожные, внутренних органов, нервной системы, костей и пр.). Конечно, многие врачи предпочитают проведение цитологической диагностики перед хирургическим вмешательством, чтобы затем опираться на нее для определения типа неоплазии. Однако стоит помнить, что ряд неопластических процессов не может быть доподлинно определен при цитологическом исследовании. Зачастую такое исследование имеет погрешность (она может быть различной в зависимости от типа опухоли, ткани и учитываемых в исследовании критериев, согласно литературным источникам). Это касается и новообразований молочных желез, которые составляют большинство биоптатов. Причина в основном состоит в том, что для цитологического исследования предоставляется весьма небольшая часть материала. 
Только при гистологическом исследовании могут быть определены архитектоника тканей (в ряде случаев это является важной прогностической информацией), границы неопластического процесса, инвазия лимфатических сосудов и окружающих тканей, хотя некоторые типы новообразований можно с легкостью определить цитологически или цитологическое исследование может дополнять гистологическое (например, в случае мастоцитомы, а иногда – лимфомы и некоторых других). 
Первый вопрос, на который должен ответить клиницист: «Что именно из всего операционного материала необходимо оправить на исследование?». Ведь иногда опухоли бывают очень большими, например большой орган или обширный пласт кожи, или, наоборот, очень маленькими. Встречаются идеальные условия, когда патолог находится в соседнем с операционной кабинете, что позволяет ему самому решать, с чем дальше иметь дело. В таком случае материал отправляется целиком, иногда даже до фиксации (допускается его охлаждение (не заморозка!) в течение 24 часов). Однако чаще всего отбором, фиксацией, вырезкой, нарезкой и микроскопией занимаются совершенно разные люди (хорошо, если они имеют возможность связаться друг с другом), поэтому важно знать основные правила отбора материала.

Основные правила отбора материала

Толщина образцов должна быть не более 1 см (иногда 2 см)

• Если опухоль располагается в толще кожи, не содержит различимой капсулы, имеет умеренную плотность и диаметр до 1 см, такой образец можно отправить целиком. 
• Если новообразование (даже небольшого размера – 1–2 см) очень плотной консистенции и имеет плотную капсулу, то фиксатор в него проникать будет тяжелее и дольше или только при определенной температуре. Это может привести к тому, что ткань в центре образца не профиксируется (что особенно важно в том случае, если он будет доставлен в лабораторию в срок, превышающий 1 сутки), поэтому такой образец следует надрезать, причем чем плотнее ткань, тем более тонкие фрагменты нужно получить. В случае, когда образец большой (орган целиком, например селезенка), его также стоит нарезать «книжечкой» на множественные фрагменты толщиной до 1 см (рис. 1). 
• При опухолевых процессах часто имеются области некроза – обычно в центре неоплазии (но могут быть исключения). Данные фрагменты следует отбирать в последнюю очередь, а в первую очередь нужно брать участок без некроза, если таковой имеется. То же самое касается выраженного гнойного воспаления (если только оно не является основным изменением). 
• При некоторых неопластических процессах стоит отправлять дренирующий лимфатический узел (молочные железы, некоторые новообразования конечностей). В таком случае этот узел необходимо отправить отдельно, так как постоперационно его может быть сложно обнаружить. Кроме того, не следует забывать, что, например, в одной молочной железе может быть несколько совершенно различных образований, поэтому (в зависимости от имеющейся возможности) либо железа отправляется целиком с указанием расположения образований, либо производится отбор нескольких образцов. В последнем случае каждый из образцов следует поместить в отдельные подписанные контейнеры, а в сопроводительном документе обязательно указать, сколько было отправлено образцов материала, какой это материал и количество контейнеров, поскольку неидентифицированный материал может быть расценен при вырезке как одно новообразование и часть проб в работу может не пойти.

Принципы оценки хирургических границ

Оценивать хирургические границы важно для определения прогнозов, возможности возникновения повторного роста новообразования. Многие клиницисты желают видеть эту информацию в заключении от патолога. Так ли все просто? Пожалуй, нет. Это сложная задача, в решении которой должны участвовать три составляющие гистологического процесса: врач, который отправляет материал, лаборант/врач/техник, который будет проводить вырезку материала, и патолог, который будет оценивать стекло. 
Вырезка – процесс, осуществляемый с фиксированным материалом в лаборатории для его последующей гистологической проводки, нарезки и фиксации. С этой целью отбираются кусочки малого размера (толщиной около 2–3 мм), позволяющего поместить их на стандартное предметное стекло.
Главная проблема заключается в предоставлении возможности участникам данного процесса контактировать друг с другом для достижения взаимопонимания.

Основные методы оценки хирургических границ:

• Метод поперечных срезов. Наиболее распространенный метод оценки хирургических границ (метод половин и четвертей). Для этого образец сначала разрезается по короткой оси, делаются срезы полученной области. Затем каждую половину разрезают по длинной оси, таким образом можно получить срезы новообразования в другой плоскости (это может быть один срез четверти новообразования либо несколько тангенциальных (по касательной) срезов в случае крупного образования) (рис. 2). Данный метод наиболее часто используется в рутинной практике, но с его помощью невозможно полностью оценить хирургические границы. Распространение опухоли может быть неравномерным, и клетки могут не попадать в срезы, полученные данным способом.
• Метод параллельных срезов. Подобно тому как материал нарезается для фиксации, образец нарезается на множественные фрагменты. Разрезы делаются параллельно, через равные промежутки (рис. 1). Таким образом, качество оценки хирургических границ напрямую зависит от количества таких разрезов, а увеличение этого количества может отражаться на стоимости исследования. 
• Метод тангенциальных срезов. Множественные тонкие (2–3 мм толщиной) фрагменты отрезаются от края образца по касательной. При обнаружении неопластических клеток в таких образцах новообразование считается удаленным не полностью. Данный метод хорош и может быть более чувствительным, чем метод поперечных срезов, но он не позволяет оценить степень удаления края опухоли от хирургических границ. Для наиболее полной оценки предпочтительным является совмещение методов поперечных и тангенциальных срезов.

При любом методе оценки хирургических границ важной информацией может служить знание о том, как располагалась опухоль относительно тела животного и в каком точно месте имеются неопластические клетки на границе. Для этого может быть удобным использование фотоматериала и красителей. 

Для маркировки образцов можно применять красители, которыми удобно отмечать границы материала, поверхности, специальные участки. Они видны в гистологических препаратах и не влияют на качество окраски. Существуют специальные гистологические красители, но можно также использовать водостойкие чернила. Краски наносят специальными кисточками или ватными палочками, после чего им дают высохнуть в течение 5–10 мин. Далее материал необходимо поместить в фиксатор (от момента отбора материала до помещения его в формалин должно пройти не более 30 минут). Если образец крупный, после окраски и просушки его стоит разрезать. В направлении указывают, какими цветами отмечены те или иные границы/участки и пр. Применение красителей более предпочтительно, чем использование шовного материала разного цвета, с разным количеством стежков. 
При отборе биоптатов из желудочно-кишечного тракта отбирают материал из места поражения. Не стоит брать биоптаты из других участков, т. к. они могут сильно отличаться от основного поражения, и в таком случае ответ на исследование может удивить клинициста. При эндоскопической биопсии осуществляют забор материала из слизистой оболочки стенки желудка или кишки с помощью специальных биопсийных щипцов. В идеале для получения адекватного образца ткани биопсийные щипцы надо, проведя через эндоскоп, ориентировать перпендикулярно слизистой органа. Как правило, эту процедуру достаточно легко выполнить в просвете желудка, но тяжело – в более узких участках, например в двенадцатиперстной кишке. В случае отсутствия специфических повреждений отбирают 6–8 образцов слизистой оболочки в области дна и тела желудка, несколько образцов антрального отдела. Если было обнаружено явное патологическое изменение, такому материалу отдают предпочтение в первую очередь.

При обнаружении язвенного поражения материал отбирают из периферии и центра (при этом нельзя допускать перфорации стенки). Несмотря на то что центральная часть язвы содержит некротическую ткань, диагностически значимые образцы могут быть получены и оттуда. 

При выявлении поражений, лежащих глубже слизистой оболочки, можно применить технику, при которой осуществляют многократный забор материала из одного и того же места, углубляясь в стенку и достигая таким образом патологического очага (хотя в этом случае полнослойный забор более предпочтителен). 
Биоптаты слизистой оболочки тонкой кишки должны быть достаточно глубокими, чтобы в образце содержались ворсинки на всю длину и область крипт. Следует помнить, что при отборе очень плотного материала образцы могут иметь слишком мелкий размер и быть сильно подвержены артефактам от травмирования браншами щипцов (артефакты сдавливания). По рекомендациям Международной ветеринарной ассоциации мелких домашних животных (the World Small Animal Veterinary Association; WSAVA), в гистологическом описании следует указывать качество образцов для того, чтобы клиницист понимал, насколько точен диагноз и насколько правильно он проводил отбор материала. 

Гистологическое исследование аутопсийного материала – последнее, по упоминанию у врачей, но не по значимости. «Человек, не прошедший специальную подготовку по ветеринарной патологии, не должен осуществлять вскрытие с идеей о том, что диагноз будет поставлен во время вскрытия» («A person not specially trained in veterinary pathology should not approach a necropsy with the idea that a diagnosis will be made during the post-mortem examination»; Terrell and Stacy, 2007). Зачастую диагноз не может быть доподлинно установлен до тех пор, пока не будет проведено гистологическое исследование. Материал в таком случае отбирается врачом-патологом. Следует помнить о правилах фиксации (см. далее) и толщине образцов. Как правило, весь материал от одного животного помещается в один контейнер. Некоторые органы фиксируются целиком: головной и спинной мозг (исключение составляют крупные животные, головной мозг которых может быть разрезан на 2–3 крупные части). Мелкие органы: гипофиз, надпочечники, щитовидные железы и пр. – помещают в гистологические кассеты, чтобы избежать утери (рис. 3). При отборе полых органов стоит ввести фиксирующую жидкость в просвет или разрезать его, оставив при этом область интереса интактной. Плоские фрагменты (стенка мочевого пузыря, диафрагма, стенка желудка) могут скручиваться, поэтому их нужно поместить на адсорбирующую подложку. Это может быть поролоновая подложка для гистологических кассет, если образец небольшого размера, или картон при наличии образцов крупного размера (материал просто кладут на подложку, при этом не требуется дополнительной фиксации иглами, швами) (рис. 4). При отборе мышц важно зафиксировать мышечные волокна, так как в процессе химической фиксации мышцы будут сжиматься, что скажется на дальнейшем микроскопическом виде, поэтому мышцы обязательно фиксируют на картонной или деревянной подложке (ею может быть деревянный шпатель) с помощью игл или специальных мышечных зажимов. 

После того как ткань перестала «жить» (отдельно от организма, без специальных условий ткани существовать не могут), она начинает подвергаться разрушению под действием собственных ферментов и бактерий, поэтому, чтобы материал сохранился, его необходимо зафиксировать. Фиксация должна проводиться сразу после отбора (исключением может служить срочное гистологическое исследование замороженного материала, о чем речь пойдет позже, в таком случае проводится фиксация охлаждением). Наиболее частым методом фиксации является химическая фиксация с помощью различных веществ. Фиксация всегда приводит к большим или меньшим изменениям структуры и объема ткани, степень выраженности которых зависит от рН фиксатора, его концентрации, температуры, продолжительности воздействия и других факторов. Концентрация ионов водорода фиксатора должна соответствовать таковой в тканях, в связи с этим фиксатор должен иметь рН, близкий к нейтральному. Слишком продолжительная фиксация приводит к значительному уплотнению материала, что в дальнейшем затрудняет его обработку (к вопросу о бессрочном хранении зафиксированного материала).

Рассмотрим некоторые фиксаторы:

• Этиловый спирт – этот фиксатор иногда пытаются использовать при отсутствии других химических веществ. Быстро фиксирует ткани, осаждает белки, вымывает жиры, иногда применяется для выявления гликогена, железа, амилоида. Главным его недостатком является сильное пересушивание и уплотнение тканей, поэтому фиксация в спирте не должна превышать одних суток. Также стоит учитывать, что дальнейшая проводка после фиксации спиртом будет несколько отличаться от таковой при фиксации формалином, поэтому всегда нужно уточнять, является ли фиксация этиловым спиртом или другими фиксаторами на его основе приемлемой в вашей лаборатории.
• Специальные фиксирующие жидкости:
• Фиксатор Буэна используется чаще в экспериментальной патологии. Содержит пикриновую кислоту, окрашивающую образец, что в дальнейшем не мешает работе с ним. Продолжительность фиксации составляет 1–24 часа, после чего материал отмывают и переносят в спирт.
• Фиксатор Дэвидсона. Содержит формалин, этанол и ледяную уксусную кислоту. Приводит к быстрому обесцвечиванию тканей, что затрудняет дальнейшую работу с ними. Фиксация не должна превышать 24 часов. Используется в экспериментальной патологии, хорошо подходит для фиксации глаз лабораторных грызунов. 
• Формалин (водный раствор формальдегида, стабилизированный метанолом) – самый недорогой и наиболее широко применяемый фиксатор. Используется 10%-й нейтральный забуференный формалин (указывается только процентное соотношение формальдегида). Если в требованиях лаборатории не указан другой фиксатор, то всегда для гистологического исследования используют именно его. В водных незабуференных растворах формальдегид со временем превращается в муравьиную кислоту, метиловый спирт и ацетон, которые ухудшают качество фиксации, как и выпадение белого осадка параформальдегида. Кроме того, забуференный формалин лучше сохраняет антигенные свойства ткани. Не стоит забывать, что формалин имеет резкий специфический запах, раздражает слизистые оболочки, является канцерогеном, поэтому любые работы с зафиксированными тканями должны проводиться только в перчатках и исключительно в вытяжном шкафу. При одновременном отборе материала для гистологического и цитологического исследований не следует подвергать стекла с цитологией действию паров формалина, необходимо максимально разделить нахождение этих двух типов материала. Длительность фиксации составляет 24–48 часов при комнатной температуре.

Соотношение объема фиксатора и фиксируемой ткани должно быть не менее 1:10–1:20.
Чаще всего объем жидкости лимитирован размерами тары (рис. 5), поэтому при отборе материала убедитесь, что подобранная тара имеет подходящий объем, который обычно указан на упаковке (объем образца можно оценить визуально, сравнить с объемом шприцев и пр.). Проследите, чтобы крышка банки была плотно закрыта. Не используйте банки с узким горлышком, т. к. после фиксации материал становится плотным и не может быть извлечен из таких емкостей (банку в подобных случаях разбивают или разрезают). Стеклянная тара не всегда идеальна, поскольку может разбиться при транспортировке. Контейнер можно положить в полиэтиленовый пакет (пакеты для продуктов с зажимом или специальные пакеты для биопроб), чтобы предотвратить вытекание фиксатора и загрязнение окружающих предметов. Обязательно нужно проследить за тем, чтобы проба при транспортировке не замерзла (если велика вероятность замерзания, к формалину можно добавить изопропиловый спирт из расчета 1 часть спирта к 10 частям формалина). Замерзание образца приводит к нарушению структуры ткани и часто к невозможности оценить ее гистологически, поэтому размороженные образцы не подходят для гистологического исследования. 
При фиксации нужно проследить, чтобы органы, размещенные на дне или у края контейнера, профиксировались целиком (поверхность, обращенная к дну, может прилипнуть и не зафиксироваться, чтобы избежать этого, материал стоит встряхнуть или «отклеить» от дна). При фиксации сильно кровенаполненных органов (например, селезенки) кровь будет разбавлять фиксатор, поэтому требуется больший объем фиксатора или предпочтительнее сделать отмывание органа. Для этого орган помещается в соответствующий объем фиксатора (1:10, как обычно), но через 12 часов фиксатор меняют на новый. 

Выводы

Информация, которая указана в данной статье, достаточно проста, но, к сожалению, врачи очень часто пренебрегают важными правилами, приведенными ниже, что делает исследования менее информативными.

• Материал должен быть зафиксирован сразу после отбора пробы (в срок до 30 минут).
• Для фиксации следует использовать только 10%-й нейтральный забуференный формалин (если лабораторией не указано использование другого фиксатора).
• Толщина образца не должна превышать 1–2 см (используйте линейку для измерения толщины образцов).
• Соотношение «ткань-фиксатор» должно составлять 1:10–1:20.
• Не нужно замораживать образцы для гистологического исследования.

Продолжение следует

Литература:

1. Washabau R. J., Day M. J., Willard M. D., Hall E. J., Jergens A. E., Mansell J., Minami T. and Bilzer T. W. Endoscopic, Biopsy, and Histopathologic Guidelines for the Evaluation of Gastrointestinal Inflammation in Companion Animals. The WSAVA International Gastrointestinal Standardization Group. ACVIM Consensus Statement, J Vet Intern Med. 2010; 24:10–26.
2. Sontas B. H., Yüzbaşıoğlu Öztürk G., Toydemir T. F., Arun S. S., Ekici H. Fine-needle aspiration biopsy of canine mammary gland tumours: a comparison between cytology and histopathology. Reprod Domest Anim. 2012 Feb; 47(1): 125–30.
3. Handbook of small animal gastroenterology, 2003.
4. Day M. J., Bilzer T., Mansell J., Wilcock B., Hall E. J., Jergens A., Minami T., Willard M. and Washabau R. Histopathological Standards for the Diagnosis of Gastrointestinal Inflammation in Endoscopic Biopsy Samples from the Dog and Cat: A Report from the World Small Animal Veterinary Association Gastrointestinal Standardization Group. J Comp Path. 2008, Vol. 138, S1eS43.
5. Jubb, Kennedy, and Palmer’s pathology of domestic animals / edited by M. Grant Maxie. 6th Edition, 2016.
6. Kamstock D. A., et al. Recommended Guidelines for Submission, Trimming, Margin Evaluation, and Reporting of Tumor Biopsy Specimens in Veterinary Surgical Pathology. Veterinary Pathology. 48(1) 19–31.
7. Todd R. Tams, Clarence A. Rawlings. Small Animal Endoscopy, 3rd Edition, 2011.
8. Jоrg M. Steiner (ed.). Small Animal Gastroenterology, 2008.
9. Kiupel M. (ed.). Surgical pathology of tumors of domestic animals. Volume 1: Epithelial tumors of the skin, 2018.

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

---

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:

• В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
• Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
• Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
• Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
• Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

---

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

---

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

Влияние кратковременной фиксации смешанным раствором формалина или этанола на механические свойства кортикальной кости человека

Образцы костей, полученные для биомеханических экспериментов, замораживают в свежем виде для хранения, чтобы замедлить деградацию тканей и автолиз при длительном хранении. В качестве альтернативы, из-за инфекционных рисков, связанных со свежими тканями, обычно используются фиксирующие агенты. Однако фиксаторы, вероятно, изменят механические свойства кости. Существующие исследования по этому вопросу дали противоречивые результаты, которые трудно сопоставить из-за разнообразия подходов к измерениям.По этой причине влияние этанола и фиксатора на основе формалина оценивали на механические свойства образцов кортикальной кости человека с помощью тестов на четырехточечный изгиб. 127 призматических образцов с прямоугольным поперечным сечением (2,5 x 2,5 x 20 мм ³ ) были получены из разных областей двух свежих бедер человека (медиального, латерального, дорсального, вентрального). Образцы либо фиксировали в этаноле, либо в растворе смешанного формалина, либо замораживали по заданной схеме. После двух недель хранения образцы повторно гидратировали в изотоническом солевом растворе и затем испытывали механически.Модуль упругости при изгибе и предел прочности при изгибе рассчитывались с учетом фактических размеров каждого конкретного образца. Для статистического анализа были выполнены однофакторный дисперсионный анализ и апостериорный LSD-тест. По предельной прочности на изгиб не было обнаружено никаких существенных различий из-за фиксации формалином или этанолом по сравнению с незафиксированными свежими образцами кости. И только в нескольких случаях наблюдались значительные различия в модуле упругости изгиба, когда две кости оценивались отдельно.Поскольку было определено больше различий значимого уровня из-за анатомической области образцов, исходное местоположение, по-видимому, оказывает большее влияние на оцениваемые механические свойства, чем метод (химической) фиксации. Следовательно, этанол и смешанный раствор формалина можно рекомендовать в качестве фиксирующего агента для образцов при биомеханических испытаниях, если эти образцы промывают изотоническим солевым раствором перед статическими механическими испытаниями.

1 Введение

В биомеханике и биомедицинской инженерии требуются механические испытания и эксперименты in vitro для получения свойств материала или подтверждения численного моделирования.Эти эксперименты следует проводить в среде, подобной in vivo. Кости и полученные образцы часто хранятся в замороженном состоянии в качестве золотого стандарта. Было доказано, что эта процедура изменяет большинство механических свойств костного материала в незначительной степени [1–3]. Однако при работе со свежезамороженными образцами существует потенциальный риск заражения исследователей при контакте с тканями. Кроме того, практически невозможно проводить длительные тесты с незафиксированными образцами из-за продолжающихся процессов деградации тканей и автолиза [4].

Чтобы свести к минимуму инфекционные риски и повысить прочность биологических тканей, образцы часто фиксируют с использованием различных химических агентов. Было предпринято несколько попыток исследовать влияние указанных фиксаторов на механические свойства кости. Тем не менее, по-прежнему нет четких выводов из-за различных условий, в которых проводилось большинство исследований. Некоторые исследовательские группы использовали кости человека [1, 5, 6], а другие проводили свои испытания с костями фауны [3, 6–10].Кроме того, либо целые кости [3, 8, 10, 11], либо обработанные образцы с однородной геометрической формой [1, 5–7, 9, 12, 13] использовались в различных испытательных установках, включая трех- и четырехточечный изгиб, испытания на сжатие, растяжение и кручение. Соответственно, результаты и выводы этих исследований сильно различаются. Некоторые авторы сообщили о существенном влиянии фиксации на механические свойства [9, 11], в то время как другие выявили лишь незначительные эффекты [1, 5–8, 10, 12, 13] или даже почти полное отсутствие влияния [3, 14].

Следующее экспериментальное исследование было проведено для оценки влияния двух различных фиксирующих агентов на механические свойства кортикальной кости бедренной кости человека. Мы предполагаем, что существуют различия между химически незафиксированными образцами и образцами, обработанными этанолом или смешанным раствором формалина. Наша вторая гипотеза заключается в том, что механические свойства кости больше зависят от анатомической области, чем от метода фиксации.

2 Материалы и методы

2.1 Подготовка и обработка проб

Образцы костей получали из двух правосторонних бедренных костей человека (F1 / 2) в свежем состоянии. При жизни доноры тел дали осознанное согласие на передачу своих тел для исследовательских целей после их смерти. Бедренные кости предварительно охлаждали, а затем подвергали шоковой заморозке при 80 ° C для хранения. Образцы костей были взяты из вентральной, дорсальной, медиальной и латеральной компактов с помощью алмазной ленточной пилы BS270-S (DRAMET Draht und Metallbau GmbH, Kleinmaischeid, Германия).Размеры каждого образца составляли 2,5 на 2,5 мм и 20 мм по оси диафиза бедренной кости. Полученные образцы снова хранили при 80 ° C и пронумеровали в порядке от проксимального до дистального.

В зависимости от количества образцов, полученных от каждого отдельного (длинного) пучка, образцы фиксировали химическими веществами в соответствии с произвольной схемой, изображенной на Рисунке 1. для обеспечения надлежащего статистического распределения. Использовали две жидкости для фиксации: технический этанол (96% по массе, Brenntag GmbH, Мюльхайм, Германия) или смешанный раствор для фиксации, содержащий формалин, этанол, дистиллированную воду, глицерин, тимол и салициловую кислоту в заданных объемах 5.5%, 60,7%, 24,8%, 8,3%, 0,5%, 0,4% и 0,3% соответственно («Hauslösung» предоставлено кафедрой анатомии Университета Ростока). Соответствующие пробирки объемом 2 мл были заполнены фиксирующей жидкостью, покрывающей весь образец кости, и объемное соотношение фиксатора и образца составляло не менее 10: 1. Химически фиксированные образцы хранили при комнатной температуре в течение 14 дней, а нефиксированные — свежие. хранились в шоковой заморозке. В таблице 1 показано распределение фиксированных образцов для каждой кости.Замороженные незакрепленные образцы оттаивали, и как незакрепленные, так и фиксированные образцы промывали в изотоническом растворе хлорида натрия в течение не менее 30 минут, чтобы минимизировать возможное влияние дегидратации [15] или удалить фиксаторы перед испытанием материала. Собственные высота и ширина каждого образца были получены с помощью штангенциркуля.

Рисунок 1

Схема химической фиксации для разного количества образцов на анатомическую область; эт! спирт этиловый; мф! фиксация смешанным формалином; уф! незафиксированный-свежий.

Таблица 1

Количество образцов костей.

кость	номер получен	этанол	смешанная фиксация	нефиксированное свежее
F1	70	24	18	28
F2	57	19	15	23

2.2 Механические испытания

Все образцы прошли испытание на четырехточечный изгиб, проведенное на электромеханической испытательной машине Zwicki-Line Z1.0 и датчике силы XforceP 1 кН (оба Zwick GmbH & Co. KG, Ульм, Германия; точность 4 Н). Ширина S между опорами была установлена ​​на 16 мм, а диапазон нагрузки L составлял 6 мм (Рисунок 2). После выдержки в течение 2 с при предварительном натяжении 2 Н образец нагружали со скоростью крейцкопфа 1 мм / мин до тех пор, пока не произошло разрушение материала, о чем свидетельствует видимое разрушение образца на отдельные части или медленное, но устойчивое уменьшение усилия. после определенного максимального значения.

Рисунок 2

Испытательная установка, показывающая нагрузки на подшипники, диапазон нагрузки L и пролет опоры S.

Данные были получены и проанализированы с помощью программного обеспечения testXpert II (V3.4, Zwick GmbH & Co. KG, Ульм, Германия). Дальнейшее исследование данных было обработано с помощью Excel 2007 (Microsoft Corporation, Редмонд, Вашингтон, США). Для каждого образца была проанализирована диаграмма «нагрузка-смещение» и был определен соответствующий линейный наклон ( F / w ) для области поведения упругого материала.В результате регрессии должен получиться коэффициент детерминации выше 0,995. Предельное напряжение и модуль упругого изгиба были рассчитаны на основе ширины образца b , высоты h и плеча рычага a = 5 мм по:

σ м а Икс знак равно 3 ⋅ F ⋅ а б ⋅ час 2 E знак равно 5.6 ⋅ Δ F Δ ш ⋅ а 3 1000 ⋅ б ⋅ час 3

Статистический анализ выполняли с использованием SPSS (V20, IBM Corp., Армонк, США) с помощью однофакторного дисперсионного анализа с последующим апостериорным LSD-тестом.Уровень значимости был установлен на p <0,050.

3 Результаты

Оценка всех испытанных образцов без учета анатомической области показала значения предельной прочности на изгиб 175,0 ± 43,0 МПа (среднее ± стандартное отклонение) для (et), 175,1 ± 41,6 МПа для (mf) и 171,7 ± 40,0 МПа для ( uf). Модуль упругости изгиба был определен как 8,7 ± 1,8 ГПа (эт.), 9,2 ± 1,8 ГПа (мс) и 9,1 ± 1,8 ГПа (мкФ), соответственно. Ни один из них не показал различий значимого уровня ( p > 0.05). Различение двух исследованных костей привело к аналогичным результатам.

Оценка возможного влияния метода фиксации на механические свойства для каждой анатомической области отдельно выявила значительные различия в модуле упругости изгиба между этанолом и смешанным формалином ( p = 0,047) и между этанолом и свежими образцами без фиксации ( p = 0,038) для вентральной области F1 и между этанолом и нефиксированным свежим ( p = 0,035) для латеральной области F2.Обобщение всех образцов обеих костей не выявило существенных различий в зависимости от способа фиксации.

Оценка региональных зависимостей механических свойств в группах одинаково обработанных образцов показала значимые различия в предельной прочности на изгиб между дорсальными и вентральными образцами, фиксированными этанолом ( p = 0,017), а также смешанным формалином ( p = 0,020) для F1. Кроме того, предел прочности на изгиб значительно различается для свежих образцов без фиксации из медиальной и латеральной областей ( p = 0.014), а также из латеральной и вентральной областей ( p = 0,041) F2. Когда все образцы были собраны вместе, была обнаружена значительная разница в предельной прочности на изгиб для незакрепленной свежей кости из медиальной и латеральной областей ( p = 0,009).

В пределах F1 было обнаружено, что модуль упругого изгиба значительно различается для свежих образцов из медиальной и вентральной областей ( p = 0,006), для образцов, фиксированных этанолом из латеральной и вентральной областей ( p = 0.024), а также из дорсальной и вентральной областей ( p = 0,030) и для образцов, обработанных смешанным раствором формалина из дорсальной и вентральной областей ( p = 0,049). Для F2 наблюдалась значительная разница в модуле упругости изгиба для незафиксированных свежих образцов из латеральной и вентральной областей ( p = 0,036). При оценке всех протестированных образцов от обеих костей вместе, значимые различия в модуле упругости изгиба между фиксированной этанолом костью из медиальной и вентральной областей ( p = 0.050), а также из латеральной и вентральной областей ( p = 0,008) и для нефиксированных свежих образцов из медиальной и латеральной областей ( p = 0,033).

4 Обсуждение

В настоящем исследовании наблюдали влияние обычно используемых химических фиксаторов на механические свойства нефиксированных образцов прямоугольной кости и сравнивали эти данные с регионально-зависимыми свойствами, полученными на образцах. Обработанные образцы были успешно испытаны в испытании на четырехточечный изгиб, что позволило исследовать модуль упругости изгиба и предел прочности при изгибе на образцах малых размеров заданной геометрической формы и анатомической ориентации.

Поскольку получить, подготовить и протестировать свежие человеческие ткани сразу после удаления сложно, образцы незакрепленных костей были временно заморожены для хранения. Хотя замораживание образцов для хранения может рассматриваться как золотой стандарт из-за незначительного воздействия на механические свойства костей [1–3], другие исследования показали изменения почти на 30% в других тканях [16]. Кроме того, возможное влияние на механические свойства из-за потери воды [15] было минимизировано путем промывки образцов перед механическими испытаниями.

Четырехточечный изгиб считается подходящим в качестве метода испытаний из-за постоянного изгибающего момента между точками нагружения. Кроме того, отсутствуют поперечные напряжения сдвига, как при испытании на трехточечный изгиб вокруг средней части образца [17]. Однако этот метод требует, чтобы сила была одинаковой в обеих точках нагружения, что довольно сложно выполнить при испытании всей кости. Тем не менее, целые кости часто используются в экспериментальных установках, и с ними легче обращаться.Однако, используя целые кости, можно рассчитать только внешние свойства и общее поведение кости с помощью широко применяемых методов испытания материалов на растяжение или сжатие. Дальнейшее определение внутренних механических свойств остается очень сложной задачей, поскольку геометрическая форма каждой кости варьируется индивидуально и, возможно, в зависимости от возраста. Следовательно, точная повторная сборка всех свойств костного материала занимает довольно много времени, а из-за неоднородностей формы требуется большое количество образцов для надежных статистических прогнозов.Здесь предпочтительны обработанные образцы предварительно определенного размера.

Учитывая большое количество различных видов доноров, условия тестирования и среды для фиксации, результаты большинства исследований трудно сравнивать. Наши результаты очень похожи на данные van Haaren et al. [3], которые также обнаружили незначительные и незначительные различия в прочности на изгиб нефиксированных и фиксированных формальдегидом целых образцов костей от коз. Однако использование костей фауны для получения выводов о двигательной системе человека остается критически важным, поскольку существуют свойства материала кортикальной кости, зависящие от вида и геометрии [18].Следовательно, наиболее надежные данные должны быть получены на костных тканях человека.

Таким образом, возможное влияние различных фиксаторов на механические свойства образцов кортикальной кости человека было исследовано в стандартных и воспроизводимых условиях тестирования. Отсутствие существенных различий между нефиксированными свежими, фиксированными этанолом и смешанным формалином образцами костей предполагает, что данные фиксирующие агенты можно использовать в краткосрочной перспективе, если представляют интерес данные, близкие к нативной ситуации, и если образцы промыть в достаточной степени изотоническим физиологическим раствором перед испытанием материала.

В заключение, мы видим, что наша первая гипотеза опровергнута, поскольку не удалось определить никаких существенных различий при сравнении трех методов фиксации. С другой стороны, наши исследования подтвердили вторую гипотезу о том, что механические свойства кости зависят от анатомической области конкретных образцов.

При дальнейших исследованиях продолжительность фиксации должна быть увеличена для изучения возможных долгосрочных эффектов. Кроме того, может представлять интерес влияние фиксирующих растворов на механические свойства губчатого вещества кости.

Заявление автора

Ссылки

[1] Linde F et al. Влияние различных способов хранения на механические свойства губчатой ​​кости. J Biomech 1993, 26, 1249-1252 Поиск в Google Scholar

[2] Kaye B et al. Влияние замораживания на механические свойства кости. Open Bone J 2012, 4, 14-19 Поиск в Google Scholar

[3] van Haaren EH et al. Влияние длительной консервации на механические свойства кортикальной кости коз. Acta Orthop 2008, 79, 708-716 Искать в Google Scholar

[4] Öhman C et al. Влияние бальзамирования с использованием 4% раствора формалина на сжимающие механические свойства кортикальной кости человека. Clin Biomech (Бристоль, Эйвон) 2008, 23, 1294-1298 Поиск в Google Scholar

[5] Burkhart KJ et al. Влияние фиксации формалина на биомеханические свойства диафизарной кости человека. Biomed Tech (Berl) 2010, 55, 361-365 Поиск в Google Scholar

[6] Unger S et al.Влияние трех различных методов консервации на механические свойства кортикальной кости человека и крупного рогатого скота. Bone 2010, 47, 1048-1053 Поиск в Google Scholar

[7] Currey JD et al. Влияние фиксации формальдегида на некоторые механические свойства бычьей кости. Биоматериалы 1995, 16, 1267-1271 Искать в Google Scholar

[8] Edmondston SJ et al. Влияние фиксации формалина на плотность позвонков и механику разрушения: исследование позвонков человека и овцы in vitro. Clin Biomech 1994, 9, 175-179 Поиск в Google Scholar

[9] Kikugawa H et al. Влияние длительной консервации формалина на свойства изгиба и трещиностойкость компактной кости крупного рогатого скота. Mater Trans 2004, 45, 3060-3064 Искать в Google Scholar

[10] Назарян А. Влияние сохранения тканей на механические свойства костей мышей. J Biomech 2009, 42, 82-86 Поиск в Google Scholar

[11] Goh JC et al. Влияние консервационной среды на механические свойства костей кошек. Acta Orthop Scand 1989, 60, 465-467 Искать в Google Scholar

[12] McElhaney J et al. Влияние бальзамирования на механические свойства говяжьей кости. J Appl Physiol 1964, 19, 1234-1236 Поиск в Google Scholar

[13] Öhman C et al. Влияние бальзамирования на сжимающие механические свойства кортикальной кости человека. J Biomech 2008, 41, S337 Поиск в Google Scholar

[14] Beaupied H et al. Способ сохранения костей не влияет на архитектуру и растяжимость бедренных костей крыс. Biomed Mater Eng 2006, 16, 253-259 Искать в Google Scholar

[15] Nyman JS et al. Влияние удаления воды на прочность и прочность кортикальной кости. J Biomech 2006, 39, 931-938 Поиск в Google Scholar

[16] Gottsauner-Wolf F et al. Влияние кондиционирования замораживания / оттаивания на свойства растяжения и режим разрушения костно-мышечных-костных единиц: биомеханическое и гистологическое исследование на собаках. J Orthop Res 1995, 13, 90-95 Искать в Google Scholar

[17] Athanasiou KA et al.Основы биомеханики в тканевой инженерии кости. Tissue Eng A 2000, 6, 361-381 Поиск в Google Scholar

[18] Wang X et al. Межвидовое сравнение свойств перелома костей. Biomed Mater Eng 1998, 8, 1 Искать в Google Scholar

Опубликовано в сети: 12.09.2015

Опубликовано в печати: 2015-9-1

© 2015 Walter de Gruyter GmbH, Берлин / Бостон

Эта статья распространяется в соответствии с условиями некоммерческой лицензии Creative Commons Attribution, которая разрешает неограниченное некоммерческое использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

Раствор формальдегида 30%, с низким содержанием метанола, 1 л | Установка | Анализ клеток | Клеточная биология | Науки о жизни | Карл Рот

30%

Учтите, что на этот продукт могут быть наложены некоторые правовые санкции, например, за получение заявления конечного пользователя или запрет некоторых приложений.За подробностями обращайтесь к своему партнеру в нашем отделе продаж! Примеры воздействия: повреждение металлов и ожог тканей тела; может вызвать серьезное повреждение глаз. Безопасность: Избегайте контакта; надевайте защитные очки и перчатки. В случае попадания в глаза и на кожу промыть водой. Примеры воздействия: В меньших количествах вызывают немедленный серьезный ущерб здоровью или смерть.Безопасность: Не вдыхайте, не касайтесь и не глотайте. Носите средства защиты труда. Немедленно позвоните в токсикологический центр или к врачу. Поза восстановления. Примеры воздействия: обладают аллергическим действием, канцерогенным, мутагенным, токсичным для репродуктивной системы и вызывают токсичность для развития (репротоксичность) или повреждение органов. Безопасность: вы должны быть хорошо проинформированы перед началом работы с этими веществами; используйте защитную одежду и перчатки, защитные очки и маску или средства защиты органов дыхания.Опасность h402-h411 + h431-h414-h417-h435-h441-h450

я вреден при проглатывании, токсичен при контакте с кожей или при вдыхании, вызывает серьезные ожоги кожи и повреждение глаз, может вызывать аллергическую кожную реакцию, может вызывать раздражение дыхательных путей, может вызывать генетические дефекты, может вызывать рак

P261 P280 P301 + P330 + P331 P303 + P361 + P353 P304 + P340 P305 + P351 + P338 P308 + P313

я избегать вдыхания газа / тумана / паров / спрея, пользоваться защитными перчатками / защитной одеждой / средствами защиты глаз / лица. ПРИ ПРОГЛАТЫВАНИИ: прополоскать рот.НЕ вызывайте рвоту. ПРИ ПОПАДАНИИ НА КОЖУ (или волосы): немедленно снимите всю загрязненную одежду. Промыть кожу водой [или принять душ]. ПРИ ВДЫХАНИИ: вывести человека на свежий воздух и обеспечить ему комфортное дыхание. ПРИ ПОПАДАНИИ В ГЛАЗА: осторожно промыть глаза водой в течение нескольких минут. Снимите контактные линзы, если они есть и это легко сделать. Продолжить полоскание, В СЛУЧАЕ воздействия или обеспокоенности: обратиться за медицинской помощью / консультацией

Сопутствующие товары

Раствор формальдегида РОТИПУРАН ^® 37%, стр.а., САУ Раствор формальдегида 37% ≥37%, Ph.Eur., USP, BP Раствор формальдегида 37% ≥37%, для синтеза Раствор формальдегида 35% ≥35%, DAB, для гистологии Раствор формальдегида 30%, низкометанол 30% Раствор формальдегида, низкометанол 23,5% Раствор формальдегида, некислый ≥37%, для гистологии

Формалин, Формол

Эмпирическая формула CH ₂ O
Молярная масса (M) 30,03 г / моль
Плотность (D) 1,09 г / см³
Температура кипения (bp) 97 ° C
Температура вспышки (flp) 73 ° C
Температура плавления (т.пл.) -15 ° C
Температура хранения.От +15 до +25 ° C
ADR 8 III
WGK 3
№ CAS [50-00-0]
EG-Nr. 200-001-8
UN-Nr. 2209

Концентрированный фиксатор для гистологии с низким содержанием метанола

Раствор почти не содержит метанола (≤1,5%). Он используется для чувствительных анализов, например. ферментно-гистохимические анализы. Не храните раствор при температуре ниже 15 ° C.

Информация о продукте Типовой анализ

Формула формальдегида

Формула и структура: Химическая формула формальдегида — CH ₂ O.Его молярная масса составляет 30,026 г / мл ^-1 . Молекула формальдегида имеет обычную функциональную группу альдегида H-C = O, связанную с водородом, так что формальдегид является наиболее простым альдегидом. Атом C имеет гибридизацию sp2, поэтому геометрия молекулы плоско-тригональная. Его химическая структура может быть записана, как показано ниже, в общих представлениях, используемых для органических молекул.

Происхождение: Формальдегид может присутствовать в природе как один из компонентов атмосферы и даже в межзвездном пространстве.Формальдегид в атмосфере образуется в результате реакции между кислородом и метаном. Формальдегид можно найти в телах млекопитающих, которые, как считается, производятся сами по себе. Он не встречается в окружающей среде, так как легко разлагается под действием солнечного света.

Приготовление: Формальдегид можно получить различными способами. Чаще всего используется окисление метанола, катализируемое металлами серебром, медью, оксидом алюминия или железом, при высокой температуре:

2 канала ₃ OH + O ₂ → 2 канала ₂ O + 2 H ₂ O

Физические свойства: Формальдегид — бесцветный газ с резким запахом.Его температура плавления и кипения составляет -15 ºC и -19,5 ºC, а его плотность составляет 1,09 г · мл ^-1 . Газообразный формальдегид растворим в воде и образует раствор, называемый формалином, с температурой кипения 121 ºC. Формальдегид бурно реагирует с сильными окислителями, такими как перекись водорода; и с оксидом азота приводят к взрывной реакции.

Химические свойства: Формальдегид — важный прекурсор в органическом синтезе. Это очень реактивный альдегид, поэтому он может легко реагировать с другими соединениями в зависимости от условий, например: конденсация с ацетальдегидом с образованием пентаэритрита, что является важным этапом в синтезе некоторых взрывчатых веществ.Другой пример — реакция Каннизаро с образованием муравьиной кислоты и метанола:

CH ₂ O + OH ^— → HCOOH + CH ₃ OH

Формальдегид также является хорошим электрофилом (он электронодефицитный), очень часто используется в электрофильных ароматических реакциях

Применение: Формальдегид широко используется в промышленности из-за его большой универсальности, способствующей большому количеству реакций. Раствор формалина используется как антисептическое и дезинфицирующее средство от большинства грибков и бактерий, а также используется для сохранения биологических образцов.Соединение пентаэритрита производится из формальдегида, используется в производстве взрывчатых веществ и красок. Кроме того, формальдегид используется для синтеза самых разных смол.

Воздействие на здоровье / опасность для здоровья: Формальдегид — очень токсичный газ. Раствор формалина летуч и вместе с газом очень ядовит для человека. Это химическое соединение, классифицируемое как канцероген для человека. При нагревании существует высокий риск взрыва. Легковоспламеняющийся.

Одновременное сохранение качества ДНК, состава сообщества и плотности пресноводных олигохет для разработки генетически обоснованных биологических показателей

Введение

Пресноводные олигохеты — ценные индикаторы качества донных отложений в реках и озерах.Однако морфологическая идентификация до уровня вида является сложной задачей и возможна только для части экземпляров, присутствующих в окружающей среде (Vivien et al., 2017).

Идентификация видов олигохет с помощью штрих-кодов ДНК может решить проблемы, связанные с морфологической идентификацией (Vivien et al., 2017). Секвенирование по Сэнгеру изолированных образцов и высокопроизводительное секвенирование (HTS) образцов, состоящих из генетически помеченных образцов (Shokralla et al., 2014) или объединенных образцов (одинаковое количество ткани между образцами), представляют собой возможные пути для идентификации видов, присутствующих в выборка и оценка их численности.Разработка таких подходов требует метода одновременного сохранения качества ДНК, плотности и структуры сообщества олигохет. Абсолютный этанол оптимально сохраняет ДНК, но фиксация олигохет этой средой может вызвать дезинтеграцию и фрагментацию образцов и, таким образом, привести к ошибочным оценкам численности и разнообразия (Rodriguez & Reynoldson, 2011). Хотя формалин является отличным фиксатором и оптимально сохраняет образцы олигохет, эта среда гораздо менее подходит для сохранения ДНК, чем абсолютный этанол (Timm & Martin, 2015).Формалин вызывает негативные эффекты на ДНК, такие как ковалентное сшивание, необратимая денатурация, модификация и фрагментация (Chaw et al., 1980; Tang, 2006; Hykin, Bi & McGuire, 2015). Однако два фактора влияют на успех амплификации и секвенирования ДНК из тканей, фиксированных формалином: продолжительность хранения в формалине и pH формалина. Показатель успешности амплификации снижается с увеличением времени хранения в формалине (Schander & Halanych, 2003; Bucklin & Allen, 2004; Baird et al., 2011). Формалин с низким pH вызывает большую деградацию ДНК, чем формалин с нейтральным буфером, особенно при длительном хранении (Koshiba et al., 1993; Schander & Halanych, 2003).

Возможно одновременное сохранение сообществ / плотностей олигохет и ДНК. Vivien, Ferrari & Pawlowski (2016) показали, что фрагмент COI (658 pb) тканей пресноводных олигохет, сохраненный в формалине с низким pH в течение одной недели перед их переносом в абсолютный этанол (при -20 ° C), может быть успешно амплифицирован с помощью ПЦР и секвенирование.Согласно этим результатам, образцы осадка можно хранить в формалине с низким pH максимум в течение одной недели перед просеиванием, а затем просеянный материал можно хранить в абсолютном этаноле при -20 ° C. Однако у этого метода есть существенный недостаток. Действительно, максимальное время хранения в формалине довольно короткое. Это означает, что просеивание отложений должно производиться быстро после отбора проб, что не всегда возможно в рамках обычного анализа, особенно если количество участков велико и если кампании по отбору проб должны проводиться в короткие сроки.Между отбором проб и просеиванием потребуется период хранения не менее 2–3 недель. Кроме того, необходимо убедиться, что добавление абсолютного этанола к фиксированным формалином сообществам олигохет не приводит к потере особей и видов.

С целью разработки генетического индекса олигохет мы протестировали возможность извлечения и амплификации фрагмента (658 п.н.) гена COI из тканей олигохет, сохраняемых в формалине с низким pH до 3 недель и в формалине с нейтральным буфером до За 4 недели до перевода на абсолютный этанол.Мы сравнили степень успешности амплификации фрагментов ткани, консервированных формалином и этанолом, и секвенировали фрагмент COI нескольких образцов, сохраненных в нейтральном забуференном формалине, чтобы убедиться, что после этой обработки были получены высококачественные полноразмерные последовательности. Кроме того, чтобы изучить возможные эффекты добавления абсолютного этанола к фиксированным формалином сообществам олигохет, мы сравнили плотность и таксономический состав фиксированных формалином олигохет нескольких просеянных проб донных отложений до и после добавления абсолютного этанола.

Материалы и методы

Исследование сохранения ДНК олигохет в формалине с низким pH и нейтральным буферным формалином

Отбор и подготовка проб

пробы донных отложений было отобрано в 2017 г. лопатой в реке Зорге (Швейцария, кантон Во) (Таблица S1). Просеивание производилось в тот же день, что и сбор. После просеивания образцы хранили при 4 ° C до сортировки. Олигохеты отделяли от просеянных проб осадка в течение максимум 10 дней после просеивания.Каждый живой образец был разрезан на от трех до восьми фрагментов одинакового размера. Один фрагмент помещали непосредственно в абсолютный этанол, тогда как другие фрагменты хранили либо в 4% формалине с низким pH (pH = 2,8-4) (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA), либо в формалине с нейтральным буфером (Richard- Allan Scientific, формалин с нейтральным буфером 10%) при 4 ° C в течение нескольких периодов времени (3 мин, 1 день, 3 дня, 6 дней, 7 дней, 10 дней, 14 дней, 21 день или 28 дней). Мы протестировали две различные концентрации нейтрального забуференного формалина (2 и 4% формальдегида), чтобы изучить возможное влияние концентрации формалина на успех амплификации.Для получения экспериментальных концентраций формальдегида нейтральный забуференный формалин, продаваемый Richard-Allan Scientific (Сан-Диего, Калифорния, США), разбавляли водопроводной водой. В конце каждого периода хранения фиксированные формалином ткани переносили на несколько секунд в водопроводную воду, а затем в абсолютный этанол. Оказавшись в этаноле, ткани немедленно хранили при -20 ° C до экстракции ДНК. Передняя часть нескольких образцов была зафиксирована и сохранена в формалине с низким pH или абсолютном этаноле для идентификации с помощью сложного микроскопа.

Экстракция ДНК, ПЦР и секвенирование

Полную геномную ДНК экстрагировали из образцов тканей с использованием гуанидинтиоцианатного метода, описанного Tkach & Pawlowski (1999). Фрагмент из 658 пар оснований гена COI амплифицировали с использованием праймеров LCO 1490 и HCO 2198 (Folmer et al., 1994). Каждую ПЦР выполняли в общем объеме 20 мкл, содержащем 0,6 единицы Taq-полимеразы (Roche), 2 мкл 10-кратного буфера (Roche, Базель, Швейцария), содержащего 20 мМ MgCl ₂ ,0.5 мкл каждого праймера (по 10 мМ каждый), 0,4 мкл смеси, содержащей 10 мМ каждого dNTP (Roche) и 0,8 мкл матричной ДНК неопределенной концентрации. Процесс ПЦР включал начальную стадию денатурации при 95 ° C в течение 5 минут, за которой следовали 35 циклов денатурации при 95 ° C в течение 40 секунд, отжиг при 44 ° C в течение 45 секунд и элонгация при 72 ° C в течение 1 минуты, с заключительный этап удлинения при 72 ° C в течение 8 мин. Затем продукты ПЦР напрямую и двунаправленно секвенировали по Сэнгеру на автоматическом секвенаторе ABI 3031 (Applied Biosystems, Фостер-Сити, Калифорния, США) с использованием тех же праймеров, что и выше, и в соответствии с протоколом производителя.Редактирование исходных последовательностей и создание смежных последовательностей выполняли с использованием CodonCode Aligner (CodonCode Corporation, Сентервилль, Массачусетс, США). Множественные выравнивания последовательностей были автоматически сгенерированы с использованием Muscle v3.8.31 (Edgar, 2004), как реализовано в Seaview v.4.4.0 (Gouy, Guindon & Gascuel, 2010).

Идентификация олигохет

Образцы были идентифицированы на уровне семейства, подсемейства или вида либо с помощью анализа стереомикроскопа / сложного микроскопа, либо генетического анализа.Для идентификации с помощью составного микроскопа передние части помещали между предметным стеклом и покровным стеклом в растворе для постоянного покрытия, состоящем из молочной кислоты, глицерина и поливинилового спирта (Mowiol 4–88).

Генетическая идентификация была выполнена с использованием филогенетического дерева с последовательностями из этого исследования и из нашей базы данных COI (Vivien et al., 2017). Для построения филогенетического дерева был применен метод объединения соседей, реализованный в Seaview v.4.4.0 (Gouy, Guindon & Gascuel, 2010), с 1000 повторениями начальной загрузки.10% -ный порог расхождения ИСП был предложен Erséus & Gustafsson (2009), Zhou et al. (2010), Вивьен и др. (2017) и Prantoni et al. (2018), чтобы различать виды олигохет. Мы применили тот же порог и поэтому посчитали, что расхождение COI <10% между последовательностями указывает на принадлежность особей к одному виду. Генетические дистанции были рассчитаны с использованием модели K2P в MEGA 5.1 (Tamura et al., 2011).

Исследование плотности и состава сообществ закрепленных формалином олигохет до и после добавления абсолютного этанола

Отбор и исследование сообществ олигохет и их плотности

Отбор проб проводился в период с 2015 по 2017 гг.Двенадцать проб донных отложений для анализа сообществ были взяты из 11 участков, распределенных между четырьмя реками и одним озером, как показано в Таблице S1. Отложения из верхних 10 см отбирались сетью типа Surber (размер ячейки 0,2 мм) в реках или грейферным пробоотборником типа Ekman в озере. На каждом участке брали по три повтора (один образец каждые 10–20 м), затем объединяли и фиксировали 37% -ным формальдегидом с низким pH (конечная концентрация формальдегида 4%) в полевых условиях. Как состав сообщества олигохет, так и плотность олигохет определялись в восьми пробах, и только плотность олигохет определялась в четырех пробах.

В лаборатории образцы осадка просеивали через колонку с ситами с размером ячеек 5 мм и 0,5 мм. Материал с размером 0,5 мм переносили в квадратную коробку для субдискретизации (5 × 5 ячеек). Содержимое случайно выбранных клеток переносили в чашку Петри и исследовали в бинокль. Последовательные клетки исследовали до получения 100 идентифицируемых олигохет. Затем рассчитывали плотность олигохет ( D ) на 0,1 м ² по следующей формуле: D = N × C × 0.1 ∕ c × X, где: D соответствует количеству олигохет на 0,1 м ² ; N количество олигохет в разведанных клетках c ; c количество разведанных ячеек; C — общее количество ячеек блока подвыборки; X — площадь выборки (в м ² ).

Для каждого из восьми образцов 100 отсортированных образцов помещали между предметным стеклом и покровным стеклом в растворе для покрытия, состоящем из молочной кислоты, глицерина и поливинилового спирта (Mowiol 4–88).Все образцы были идентифицированы до самого низкого практического уровня (если возможно, вида).

Материал квадрата подвыборки каждого образца (12 образцов) затем переносили в коробку Tupperware и хранили в 4% формальдегиде при 4 ° C. Чтобы изучить возможное влияние абсолютного этанола на плотность и состав сообщества фиксированных формалином олигохет, мы полностью удалили формалин из каждого образца, добавили абсолютный этанол в образцы (конечная концентрация этанола 100%) и хранили их при -20 ° C. от 1 до 3 дней.Затем выполняли сортировку, определение плотности, размещение и идентификацию олигохет, как описано выше.

Статистический анализ

Корреляции между плотностями олигохет (на 0,1 м ² ) и процентами семейств / подсемейств, которые часто встречались в наших выборках (Tubificinae, Tubificinae с волосковыми щетинками, Tubificinae без волосяных щетинок, Naidinae и Lumbriculidae), полученные до и после добавления абсолютного этанола были изучены путем расчета коэффициента детерминации R ² и с применением теста Пирсона.Эти анализы были выполнены с использованием бесплатного программного обеспечения для статистики и прогнозирования (Wessa, 2017).

Результаты

Исследование формалина с низким pH и нейтральным буферным раствором

Всего было отсортировано 43 образца из различных просеянных проб донных отложений. Девятнадцать были использованы для исследования формалина с низким pH и 24 — для исследования нейтрального буферного формалина. 10 образцов консервировали в нейтральном забуференном формальдегиде 2% и 14 — в нейтральном забуференном формальдегиде 4%.

Из 43 проанализированных особей идентифицировано 39 особей. Образцы исследования формалина с низким pH принадлежали к 4 различным таксонам (Таблица S2): Tubificinae sp, Naidinae sp, Lumbriculidae sp и Stylodrilus heringianus . Исследования нейтрального буферного формалина принадлежали к 8 различным таксонам: 3 линии Tubifex tubifex , 2 линии Limnodrilus hoffmeisteri , Tubificinae sp, Limnodrilus udekemianus и Limnodrilus 904 claparedian.

Фрагмент COI всех образцов, хранившихся в формалине с низким pH в течение периодов до 3 дней, был успешно амплифицирован с помощью ПЦР, но фрагмент COI только части образцов, хранившихся в формалине с низким pH в течение 7–21 дней, был амплифицирован, около 50% через 7 дней и менее 20% через 14 и 21 день (рис. 1, таблица S3).

Рисунок 1: Процент успеха амплификации (фрагмент COI), полученный после фиксации / сохранения образцов олигохет в абсолютном этаноле и в нейтральном забуференном формалине и формалине с низким pH с течением времени.

Количество проанализированных образцов для каждого раза и обработки указано в скобках (x инд.).

Напротив, фрагмент COI всех образцов, хранившихся в нейтральном забуференном формалине до 28 дней, был успешно амплифицирован с помощью ПЦР. Для всех образцов интенсивность полос ПЦР была достаточной для секвенирования по Сэнгеру. Мы не наблюдали различий в интенсивности полосы ПЦР между двумя разными тестируемыми концентрациями нейтрального забуференного формалина (2 и 4% формальдегида) (таблица S3).

Восемнадцать образцов, хранящихся в нейтральном забуференном формалине в течение периодов от 14 до 28 дней (6 в течение 14 дней, 6 в течение 21 дня и 6 в течение 28 дней), были секвенированы. Все полученные последовательности были целыми и качественными.

Таблица 1:

Плотность и состав сообществ фиксированных формалином олигохет на сайт до и после добавления абсолютного этанола.

Плотность олигохет на 0,1 м ² , количество таксонов олигохет и процентное соотношение Tubificinae с волосяными щетинками, Tubificinae без волосяных щетинок, Naidinae, Pristininae, Rhyacodrilinae, Enchytraeidae, Lumbriculidae, Propappidae и Lumbriculidae, Propappidae и Lumbriculidae.

Водоток или озеро	Ярлык объекта	Дата отбора пробы	До (F) или после (Eth) добавления абсолютного этанола	Плотность	Кол-во таксонов	% Tubificinae с волосковыми щетинками	% Tubificinae без волосковых щетинок	% Найдины	% Pristininae	% Rhyacodrilinae	% Enchytraeidae	% Поясничные	% Propappidae	% Люмбрициды
канал дю Syndicat	сайт 2	2017	F	24 380	7	25	14	61	0	0	0	0	0	0
канал дю Синдикат	сайт 2	2017	Eth	30 857	10	20	18	61	0	0	1	0	0	0
канал дю Бра-Нёф	сайт 2	2017	F	7 417	9	40	14	46	0	0	0	0	0	0
канал дю Бра-Нёф	сайт 2	2017	Eth	8,667	11	42	9	48	0	0	1	0	0	0
Женевское озеро	сайт 3	2015	F	2,238	11	83	12	5	0	0	0	0	0	0
Женевское озеро	сайт 3	2015	Eth	1 705	6	78	19	3	0	0	0	0	0	0
Женевское озеро	сайт 5	2015	F	1 570	16	77	15	5	0	0	0	3	0	0
Женевское озеро	сайт 5	2015	Eth	1,646	14	65	29	5	0	0	0	1	0	0
Женевское озеро	сайт 2	2015	F	479	12	44	35	1	0	0	0	20	0	0
Женевское озеро	сайт 2	2015	Eth	556	12	48	37	0	0	0	0	15	0	0
Женевское озеро	сайт 15	2015	F	238	13	21	30	1	0	0	0	48	0	0
Женевское озеро	сайт 15	2015	Eth	228	9	13	43	0	0	0	0	44	0	0
Ардьер	сайт 3	2016	F	1 063	14	22	62	5	9	0	1	0	1	0
Ардьер	сайт 3	2016	Eth	1 042	13	13	69	2	9	0	3	1	3	0
Ардьер	сайт 3	2017	F	2,292	11	23	42	33	0	1	1	0	0	0
Ардьер	сайт 3	2017	Eth	2 083	11	20	47	30	0	0	2	0	0	1
Venoge	сайт 1	2015	F	4 074
Venoge	сайт 1	2015	Eth	4 622
Venoge	сайт 2	2015	F	9 222
Venoge	сайт 2	2015	Eth	11 000
Ардьер	сайт 1	2016	F	1 583
Ардьер	сайт 1	2016	Eth	2 500
Ардьер	сайт 2	2017	F	4,583
Ардьер	сайт 2	2017	Eth	4,500

DOI: 10.7717 / peerj.6050 / таблица-1

Фиксированные формалином олигохеты до и после добавления абсолютного этанола

Плотность и состав сообществ фиксированных формалином олигохет, наблюдаемых до и после добавления абсолютного этанола, были близкими (Таблица 1, Таблица S4). Корреляция между плотностями олигохет, определенная до и после добавления абсолютного этанола, была высокозначимой ( R ² = 0,996, p = 1,4 * 10 ⁻¹³ ) (рис.S1). После добавления этанола плотности были ниже для 5 образцов (от -1,8% до -24%) и выше для 7 образцов (от 4,6% до 37%). Корреляция между процентным соотношением Tubificinae, Tubificinae с волосковыми щетинками, Tubificinae без волосяных щетинок, Naidinae и Lumbriculidae, полученная до и после добавления абсолютного этанола, была очень значимой (для Tubificinae: R ² = 0,996, p = 2,5 * 10 ⁻⁸ ; для Tubificinae с волосяными щетинками: R ² = 0.953, p = 3,2 * 10 ⁻⁵ ; для Tubificinae без волосков: R ² = 0,906, p = 0,0003; для Naidinae: R ² = 0,996, p = 1,8 * 10 ⁻⁸ ; для Lumbriculidae: R ² = 0,992, p = 1,2 * 10 ⁻⁷ ) (рис. S1). Общее количество таксонов (на сайт) различается до и после добавления абсолютного этанола. После добавления этанола общее количество таксонов было выше в двух образцах, ниже в четырех и одинаково в двух.Однако таксоны, не обнаруженные или вновь обнаруженные после добавления этанола, были представлены несколькими образцами (≤6 и в основном только 1 образец).

Обсуждение

Наше исследование показало, что фрагмент COI размером 658 п.н. из тканей пресноводных олигохет, зафиксированный в нейтральном забуференном формалине и сохраненный в этой среде до 4 недель, можно успешно амплифицировать и секвенировать. Мы не наблюдали различий между успешностью амплификации фиксированных / консервированных образцов этанолом и фиксированных / консервированных образцов с нейтральным буферным формалином.После 7 дней хранения наблюдалось значительное снижение успешности амплификации фиксированных образцов формалина с низким pH. Срок хранения тканей в этой среде, вероятно, составляет от 3 до 7 дней. Показатель успешности амплификации, близкий к 100% при сроке хранения 7 дней, по данным Vivien et al. (2017), в настоящей работе не подтверждено. Наши результаты показывают, что образцы не следует хранить в формалине с низким pH более 3 дней, чтобы гарантировать 100% успешность амплификации.Различия в успешности амплификации, наблюдаемые между формалином с нейтральным буфером и формалином с низким pH, предполагают, что повреждение ДНК в течение короткого времени хранения связано с кислотностью формалина. Баклин и Аллен (2004) также отметили, что ДНК повреждается в большей степени в формалине с низким pH, чем в формалине с нейтральным буфером. Эти авторы показали, что формалин с нейтральным буфером более подходит для сохранения тканей зоопланктона, чем формалин с низким pH, особенно если ткани хранились в формалине в течение длительного времени.Фрагменты COI меньшего размера, чем 658 п.н., обычно используются для метабаркодирования ДНК (например, Leray et al., 2013). Мы подчеркиваем, что использование нейтрального забуференного формалина для фиксации / сохранения тканей олигохет (до 4 недель) также будет подходящим для амплификации таких небольших фрагментов COI и, таким образом, для разработки генетических индексов на основе анализа образцов олигохет.

После добавления абсолютного этанола к образцам фиксированных формалином олигохет плотность олигохет и общее количество таксонов существенно не изменились.Кроме того, процентное соотношение различных семейств / подсемейств до и после добавления абсолютного этанола было одинаковым. Таким образом, мы не можем заключить, что добавление абсолютного этанола вызывает некоторую потерю образцов и видов. Различия, наблюдаемые до и после добавления абсолютного этанола, вероятно, объясняются естественной изменчивостью плотности и состава таксонов между разными ячейками квадрата подвыборки. Таким образом, наши результаты показывают, что при добавлении абсолютного этанола не происходит распада или фрагментации олигохет, если образцы предварительно фиксировали формалином.

На основе этих результатов мы предлагаем в файле S1 протокол для фиксации и сохранения олигохет, описывающий различные этапы от сбора осадков до сохранения биологического материала в абсолютном этаноле. Важно, чтобы отложения хранились в растворе не более 4% нейтрального забуференного формальдегида, поскольку успех амплификации и секвенирования фрагмента COI из тканей, сохраненных в более высоких концентрациях, не гарантируется. Раствор 4% нейтрального забуференного формальдегида следует добавить после удаления надосадочной воды (первые шаги нашего протокола).

Наши результаты позволяют разработать генетический индекс, основанный на метабаркодировании ДНК образцов олигохет. Наш метод может быть применен к другим организмам с мягким телом, таким как пиявки, полихеты и плательминты, которые также могут быть повреждены прямой фиксацией абсолютным этанолом. Для морфологического исследования беспозвоночных с мягким телом рекомендуется использовать формалин для фиксации организмов и этанол для длительного хранения фиксированных формалином образцов (Pfannkuche & Thiel, 1988; Mackie, 1994; Wilson, 2005; Häussermann, 2009).Однако для генетических исследований беспозвоночных, включая организмы с мягким телом, абсолютный этанол в основном используется для фиксации организмов (например, Krogmann & Holstein, 2010; Elbrecht et al., 2017), поскольку формалин может препятствовать последующему генетическому анализу. Использование нейтрального забуференного формалина вместо абсолютного этанола для фиксации организмов в рамках экологических исследований, основанных на анализе HTS образцов, составленных из отсортированных образцов беспозвоночных, могло бы стать решением для одновременного сохранения качества ДНК, плотности и состава сообщества всех беспозвоночных. .

Заключение

В этом исследовании мы показали, что образцы осадка можно хранить в нейтральном забуференном формалине (до 4% формальдегида) до 4 недель, не влияя на качество ДНК олигохет и не препятствуя последующей ПЦР-амплификации фрагмента COI. После просеивания материал можно перевести в абсолютный этанол без изменения плотности и состава сообщества олигохет. Этот метод фиксации / сохранения актуален для создания всеобъемлющих баз данных эталонных штрих-кодов ДНК и реестров генетического разнообразия, а также для разработки новых генетически обоснованных индексов для приложений биомониторинга.Этот метод также может оказаться подходящим для одновременного сохранения качества ДНК, плотности и состава сообщества других беспозвоночных с мягким телом, которые могут быть повреждены прямой фиксацией абсолютным этанолом.

Дополнительная информация

Взаимосвязь между процентами плотности олигохет и семейств / подсемейств, полученных до и после добавления абсолютного этанола к фиксированным формалином сообществам олигохет

Плотности олигохет на 0.1 м ² (A), Tubificinae (B), Tubificinae с волосяными щетинками (C), Tubificinae без волосяных щетинок (D), Naidinae (E) и Lumbriculidae (F).

DOI: 10.7717 / peerj.6050 / supp-1

Исследование сохранения ДНК олигохет в формалине с низким pH и нейтральным забуференным формалином: проведен анализ каждого образца

Для каждого образца указаны разные периоды хранения в формалине с низким pH (от 3 минут до 21 дня) или в нейтральном забуференном формалине (от 3 минут до 28 дней), фиксация / сохранение в абсолютном этаноле и таксономическая идентификация. .X = проведенный анализ; для образцов от 1,121 до 1,129: 2% формальдегида; для проб от 1130 до 1147: формальдегид 4%; После названия каждого таксона в скобках указано, как образец был идентифицирован: 1 = с помощью стереомикроскопа, 2 = с помощью сложного микроскопа, 3 = с помощью генетического анализа.

DOI: 10.7717 / peerj.6050 / supp-3

Количество успешно амплифицированных образцов / общее количество проанализированных образцов для сохранения этанола и сохранения формалина с низким pH / нейтральным буфером с течением времени

DOI: 10.7717 / peerj.6050 / supp-4

Количество образцов каждого таксона, полученных на участке до (F) и после (Eth) добавления абсолютного этанола к фиксированным формалином сообществам олигохет

DOI: 10.7717 / peerj.6050 / supp-5

Протокол для одновременного сохранения качества ДНК, плотности и состава сообщества пресноводных олигохет

DOI: 10.7717 / peerj.6050 / supp-6

Краткое руководство по фиксации ткани для гистологии

Основные моменты:

• Свежесобранные ткани, представляющие интерес, должны быть немедленно исправлены, чтобы избежать деградации.

• 10% формалин с нейтральным буфером (NBF) или 4% раствор параформальдегида (PFA) обычно используются для гистологии. Это эффективные фиксаторы для H&E, большинства иммуногистохимических (ИГХ) маркеров и специальных красителей.

• Оптимальная фиксация — ключ к лучшим результатам гистопатологии.

Введение в фиксацию тканей

Базовое тестирование при анатомической патологии и микроскопическое исследование ткани требует оптимальной фиксации, обработки, разделения и окрашивания ткани.Фиксация — важный начальный шаг в гистологии. Плохая фиксация может привести к множеству неточных результатов, включая специальные окрашивания, иммуногистохимию и другие гистологические методы. Хорошо сохранившаяся ткань сохраняет свою структуру и реактивность по отношению к таким реагентам, как специальные красители, антитела для иммуногистохимии и зонды нуклеиновых кислот для гибридизационных тестов in situ и . Как недостаточная фиксация, так и чрезмерная фиксация могут вызвать множество проблем в гистологии, однако недостаточная фиксация может быть более серьезной проблемой, чем чрезмерная фиксация, и ее следует избегать.Особого внимания может потребовать фиксация жировой ткани, такой как ткань мозга человека, крысы или мыши. Оптимальная фиксация ткани обеспечивает сохранение клеточных и внеклеточных структур для достижения тонких срезов, оптимального гистохимического окрашивания и длительного хранения и архивирования. Здесь мы кратко обсудим важные факторы для достижения оптимальной фиксации как для тканей человека, так и для ветеринарных тканей.

Что такое фиксация тканей?

Фиксация — это химический процесс, с помощью которого биологическая ткань сохраняется, чтобы максимально отобразить состояние in vivo образца.Чтобы сохранить образец ткани в состоянии, максимально приближенном к жизненному, необходимо провести посмертные процессы автолиза, который представляет собой саморазложение с помощью протеолитических ферментов, и / или гниение, которое представляет собой разложение органического вещества под действием микроорганизмов. остановился. Идеальный фиксатор должен сохранять данный образец ткани таким образом, чтобы он соответствовал его положению in vivo ; клеточная и внеклеточная морфология должна быть сохранена, а фиксатор не должен денатурировать белки, которые важны для гистопатологического анализа.

Общие фиксаторы для гистологии

Существует ряд фиксаторов, и использование определенного типа диктуется последующим анализом. Для гистологии наиболее эффективными и часто используемыми фиксаторами являются альдегиды. Следующие фиксаторы рекомендуются для окрашивания H&E, а также большинства маркеров IHC и специальных красителей:

1. Нейтральный буферный формалин (NBF): 10% буферный раствор формальдегида, pH 7,0-7,4, обычно используется в большинстве лабораторий.Сразу после операции ткань полностью погружают в 10% раствор NBF и рассчитывают время. Готовое решение доступно от различных поставщиков в США. Время фиксации определяет оптимальную фиксацию, как обсуждается далее.

2. Раствор параформальдегида (PFA): свежеприготовленный 4% раствор PFA дает аналогичные результаты и является экономически эффективным. Из-за быстрого разложения этот раствор каждый раз перед использованием готовят в свежем виде.

Механизм действия и количество формальдегида в обоих растворах одинаковы.

Механизм действия

Механизм действия фиксации заключается в быстром прекращении всех текущих ферментативных реакций и метаболической активности путем денатурирования внутренних биомолекул. При этом протеолитические ферменты, которые в противном случае переваривали бы образец ткани посредством автолиза, денатурируются, и автолитические процессы останавливаются. Фиксаторы также защищают образец от внешних повреждений, поскольку они токсичны для большинства обычных микроорганизмов (в частности, бактерий), которые в противном случае могут колонизировать образец ткани.Кроме того, многие фиксаторы химически изменяют обработанную ткань, делая ее менее привлекательной для условно-патогенных микроорганизмов, тем самым предотвращая процесс гниения.

Механизм фиксации формальдегида заключается в сшивании или создании ковалентных химических связей между аминокислотными остатками, чаще всего аминокислотными остатками лизина (аминогруппы боковой цепи лизина), что приводит к образованию метиленовых мостиков. Сшивание формальдегида также может происходить между аминометилольными группами и боковыми цепями фенола, индола и имидазола.Кроме того, формальдегид действует на множество аминокислот, таких как лизин, аргинин, тирозин, аспарагин, гистидин, глутамин и серин. Сшивающие фиксаторы поддерживают внутренние структуры образца и не наносят значительного вреда структуре белка. Использование формальдегида является благоприятным, поскольку он поддерживает морфологию образца ткани, а вторичная и третичная структура белка не изменяются и, таким образом, сохраняются. Было высказано предположение, что формальдегид является эффективным фиксатором из-за его высокой скорости проникновения.

Способы фиксации

Существует два способа фиксации ткани — иммерсионная и транскардиальная перфузия. Иммерсионная фиксация заключается в помещении свежесобранной ткани в достаточное количество фиксатора. Это самый простой и распространенный способ фиксации. С другой стороны, транскардиальная перфузия использует систему кровообращения для распространения фиксатора, что при умелом выполнении приводит к быстрой и эффективной фиксации. Этот метод обычно приводит к хорошо сохранившейся морфологии с минимальной деградацией, вызванной автолизом или гниением.

Для грызунов и других мелких животных настоятельно рекомендуется транскардиальная перфузия для получения наилучших результатов. После транскардиальной перфузии извлеченные интересующие органы можно погрузить в фиксатор для обеспечения полной фиксации.

Длина фиксации

Фиксатор следует подвергать воздействию образца ткани столько времени, сколько необходимо для полного проникновения раствора в образец. Для иммерсионной фиксации необходимо учитывать определенные факторы, такие как плотность образца ткани, скорость проникновения и температура.Важно отметить, что скорость проникновения и скорость фиксации — это два совершенно разных процесса фиксации, причем последний протекает медленнее, чем первый. Общее практическое правило для скорости проникновения — 1 мм / час. Для образцов, обработанных NBF, рекомендуется время фиксации 24 часа.

Недофиксация (раннее удаление фиксатора из обработанной ткани) может привести к плохой морфологической сохранности, в то время как чрезмерная фиксация (позднее удаление фиксатора из обработанной ткани) может привести к артефактам фиксации, потере сигнала или усилению неспецифические фоновые сигналы («шум»).Как правило, не рекомендуется фиксировать ткань более 36 часов, чтобы избежать чрезмерной фиксации. Обе проблемы требуют собственного решения, и их следует избегать при фиксации образца ткани. Таким образом, продолжительность воздействия фиксатора на образец является очень важным вопросом, который необходимо тщательно калибровать.

После процесса фиксации артефакты могут появиться по мере высыхания образца. Эти артефакты могут быть в форме потери органелл, ядерной усадки и артефактов, поэтому очень важно поддерживать обработанный образец влажным с помощью фосфатного буфера / физиологического раствора, чтобы продолжать точно сохранять образец.

Размер ткани и объем фиксатора

Фиксаторы — плохие буферы; следовательно, pH раствора имеет тенденцию изменяться в процессе фиксации. Большой объем фиксатора обеспечит оптимальную фиксацию. Объем используемого фиксатора должен быть примерно в 15-20 раз больше объема ткани. Большой объем будет способствовать адекватному выполнению фиксации при сохранении стабильности реагента. Для достижения наилучших результатов ткань следует разрезать на кусочки толщиной не более 4-5 мм в одном измерении.Если интересующая ткань необходима для других целей / приложений (молекулярные тесты и т. Д.), Ее можно разрезать и мгновенно заморозить отдельно перед фиксацией.

Резюме

• Фиксация должна выполняться сразу после операции / рассечения.

• Зафиксируйте ткань в 10% нейтральном буферном растворе формальдегида (NBF) или свежеприготовленном 4% растворе параформальдегида. Фиксаторы на основе формальдегида предпочтительны для длительного сохранения тканей и, как известно, дают наилучшие результаты для срезов, морфологии (H&E), специальных красителей и иммуногистохимии.

• Разрежьте ткань на более мелкие кусочки (макс. 4-5 мм) и используйте достаточное количество фиксатора, убедившись, что ткань полностью погружена в фиксатор.

• Продолжительность фиксации не должна превышать 24-36 часов в зависимости от размера ткани. Время воздействия фиксатора на образец очень важно и должно быть откалибровано.

• Фиксированные ткани следует перевести в PBS или 70% этанол и отправить на обработку для подготовки тканевых блоков.

Проконсультируйтесь с персоналом лаборатории, если вам необходимо хранить фиксированные ткани в течение более длительного времени или вам нужны дополнительные рекомендации по фиксации и / или транспортировке образцов тканей. Вопросы можно отправлять по электронной почте [email protected].

Автор: Ханна Башар

Отредактировал: Раджни Шарма, Ph.D.

Прогресс в исследованиях эмиссии формальдегида из древесных плит

Рассматривается текущий прогресс в исследованиях механизма и влияющих факторов эмиссии формальдегида из древесных плит.Краткое изложение формальдегидного анализа и методов испытаний выдвигает новую идею по исследованию значимости выбросов формальдегида и коэффициента загрузки древесных плит при комбинированном действии влияющих факторов. Определены количественные показатели нагрузки на древесные панели в конкретном помещении в соответствии с требованиями к выбросам формальдегида, которые обеспечивают предварительную техническую поддержку для улучшения внутренней отделки и дизайна мебели.

1. Введение

Древесные панели широко используются в производстве мебели и в проектах внутренней отделки благодаря преимуществам простоты обработки и стабильности размеров.Однако древесные плиты выделяют формальдегид, если используется смола на основе формальдегида, и другие вредные газы, вызывая загрязнение воздуха в помещении. Guo et al. [1] провели обследование 2324 комнат в Ханчжоу в течение одного года и обнаружили, что 38,9% выборок превышают требования китайских национальных стандартов. Формальдегид был классифицирован как потенциально опасный канцероген и важный загрязнитель окружающей среды Всемирной организацией здравоохранения и Агентством по охране окружающей среды США.Chen et al. [2] обнаружили, что высокая концентрация формальдегида токсична для нервной системы, иммунной системы и печени. Целью этого отчета является обзор нормативов по выбросам формальдегида в разных странах и влияющих факторов, чтобы можно было эффективно контролировать загрязнение формальдегидом древесных плит и изделий из них.

2. Прогресс исследований эмиссии формальдегида из древесных плит

2.1. Источник и механизм выделения формальдегида из древесных плит

За последнее десятилетие было проведено значительное количество исследований по вопросу эмиссии формальдегида из древесных плит.Выбросы формальдегида в основном происходят из трех источников: (1) соединение формальдегида в древесном материале, (2) остаточный свободный формальдегид смолы на основе формальдегида, который не участвует в реакции, и (3) формальдегид, высвобождаемый в результате структурной деградации используется панель на древесной основе. Среди них основной источник загрязнения воздуха в помещении — остаточный свободный формальдегид в панели.

Формальдегид древесных плит можно разделить на две части: свободный формальдегид высвобождается легче и труднее высвобождается со связанным формальдегидом.Скорость выделения формальдегида может быть двухступенчатой. На первом этапе выделяется в основном свободный формальдегид. Скорость эмиссии зависит от скорости диффузии свободного формальдегида в панели, на которую влияет градиент концентрации формальдегида в панели. Вентиляция может ускорить выделение формальдегида. Этот этап может длиться 1-2 недели или 1-3 месяца, в зависимости от количества свободного формальдегида в доске. На втором этапе выброс происходит из связанного формальдегида, скорость выделения которого зависит от силы сцепления, и вентиляция будет иметь небольшой эффект.2 стадия может длиться до нескольких лет.

Лю [3] обнаружил, что необходимые и достаточные условия выделения формальдегида из деревянных панелей были тогда, когда давление воздуха внутри деревянной панели больше, чем в окружающей среде, и имеется канал для циркуляции воздуха, так что формальдегид может релиз. Xing et al. [4] пришли к выводу, что эмиссия формальдегида происходила в основном с краев панели, что более чем в 2 раза превышало эмиссию с поверхности панели. Следовательно, чем тоньше плита, тем больше выделяется формальдегид.Мэн и Хун [5] разделили процесс выделения формальдегида из древесных плит на три стадии: быстрое высвобождение, медленное высвобождение и полное высвобождение.

2.2. Стандарты выбросов формальдегида для древесных плит

В связи с опасностью формальдегида для здоровья человека многие страны устанавливают требования к выбросам формальдегида и методы испытаний на выбросы формальдегида для древесных плит.

Wang et al. [6] и Луо [7] провели сравнительное исследование различных методов тестирования выбросов формальдегида древесными плитами в Китае, Европейском союзе (ЕС), США и Японии.Текущие стандарты ЕС, касающиеся выбросов формальдегида, включают один стандарт выбросов, 4 стандарта на продукцию и 4 стандарта на методы. В Соединенных Штатах есть 2 правила, 3 стандарта на продукцию и 3 стандарта на методы, связанные с выбросами формальдегида. В Японии есть 4 стандарта на продукцию и 4 стандарта на методы. Китайские национальные стандарты эмиссии формальдегида включают стандарт эмиссии: «GB 18580-2001 Внутренние отделочные и ремонтные материалы — Предел эмиссии формальдегида древесных плит и отделочных материалов», более 50 стандартов на продукцию и 3 стандарта на методы (см. Таблицу 1 ).

Стандарт Предельное значение Марка Метод испытаний Область применения EN13986: 2005 ≤3,5 мг / (м · ч) ≤8 мг / (м 2 · ч) E 1 Анализ газов Фанера E 2 ≤8 мг / 100 г ≤ 30 мг / 100 г E 1 E 2 Перфорация МДФ PB Эмиссия формальдегида Стандарты для композитной древесины Закон (S.1660, HR4805) ≤0,05 ppm ≤0,09 ppm ≤0,11 ppm ≤0,13 ppm â € Камера Фанера PB МДФ ≤8 мм МДФ JIS A 1460-2001 ≤0,3 / 0,4 мг / л ≤0,5 / 0,7 мг / л ≤1,5 ​​/ 2,1 мг / л F ☆☆☆☆ F ☆☆☆ F ☆☆ Эксикатор Фанера МДФ PB GB / T9846.3-2004 ≤0,5 мг / л E 0 Эксикатор Фанера GB18580-2001 ≤1,5 ​​мг / л ≤5,0 мг / л E 1 E 2 Эксикатор Фанера ≤9 мг / 100 г ≤30 мг / 100 г E 1 E 2 Перфорация MDF PB

В стандарте США для выделения формальдегида описаны три метода тестирования: большая камера, малая камера и эксикатор.Стандарты США не классифицируют уровни ограничения выбросов формальдегида. Стандарт США дает предельное значение эмиссии формальдегида камерным методом.

Японские стандарты устанавливают предельные значения методом эксикатора с 4 уровнями предельного уровня формальдегида, включая среднее и максимальное значение. F ^★★★★ — это самый строгий уровень эмиссии формальдегида со средним значением менее 0,3 мг / л. Так называемая нулевая эмиссия формальдегида определяется как ≤0,3 мг / л, потому что эмиссия формальдегида из натуральной древесины обычно равна 0.1 ~ 0,3 мг / л, испытано методом эксикатора.

Китайские стандарты и стандарты ЕС имеют больше общего: (1) ограниченная классификация: и китайские стандарты, и стандарты ЕС имеют классификацию выбросов формальдегида на уровне E, например E0, E1 и E2. В стандартах ЕС нет уровня E0. Китайские стандарты древесных панелей имеют уровень E0 в GB / T 5849-2006 «Блочная плита» и GB / T 15104-2006 «Декоративные шпоном панели на деревянной основе», в которых для проверки формальдегида используется метод эксикатора. В других стандартах древесных плит, таких как древесноволокнистая плита средней плотности (МДФ) и древесно-стружечная плита (ПБ), уровень E0 не предусмотрен.(2) Методы испытаний: в китайском обязательном стандарте используются эксикаторный, перфорационный и камерный метод. Метод газового анализа используется только в рекомендованном стандарте на продукцию. В стандарте ЕС используются методы перфорации, газового анализа и камерные методы. (3) Ограниченное значение: предельное значение метода перфорации E1 в китайском обязательном стандарте выше, чем в ЕС. Значение E1 для GB / T 11718 такое же, как и в европейском стандарте. Предельное значение E1 для камерного метода в китайском обязательном стандарте ниже, чем в ЕС, в то время как значение E1 для GB / T 11718 немного выше, чем в европейском стандарте.Предельное значение метода газового анализа имеет два уровня в ЕС, в то время как стандарт GB / T 11718 предоставляет только одно предельное значение, которое эквивалентно уровню E1 ЕС.

Реализация этих стандартов обеспечивает основу для эффективного контроля за загрязнением формальдегидом. Но есть и недостатки, различия в ограниченном значении и методах испытаний между стандартами вызывают разницу в результатах суждений.

2.3. Методы тестирования формальдегида

Содержание формальдегида и выделение формальдегида — это две разные концепции.Содержание формальдегида означает количество миллиграммов формальдегида на 100 граммов панели, которое проверяется методом перфорации. Эмиссия формальдегида — это количество формальдегида, выделяющееся из древесных плит в определенный объем воздуха или определенное количество воды в течение определенного периода времени, которое всегда проверяется с помощью метода камеры или эксикатора.

Zhu et al. [8] разделили методы тестирования формальдегида на три категории: метод тестирования общего количества, такой как перфорация; метод испытания на статические выбросы, такой как эксикатор; и метод динамического тестирования выбросов, такой как камера.Камерный метод широко применяется в США и Германии. В стандартах ЕС используются камерный, газовый методы анализа и методы перфорации. В японских стандартах используется метод эксикатора. Согласно китайскому обязательному национальному стандарту GB 18580-2001, МДФ и ПБ испытываются методом перфорации, а фанера и блочная плита — методом эксикатора (9–11) L. Для метода эксикатора обычно используется эксикатор на 40 л для проверки ламината и паркета. Если есть разногласия по поводу результата, используется метод арбитража с использованием камеры 1 м ³ .

Каждый метод тестирования имеет свои преимущества и недостатки. Камерный метод более близок к практическому применению с точки зрения температуры, относительной влажности, скорости нагружения, скорости воздухообмена и скорости воздуха на поверхности образца. Корпус камеры большой, а время тестирования долгое.

Единицы измерения и значения предельных значений формальдегида всех уровней (E0, E1, E2 и F ^★★★★ ) различаются из-за разных методов тестирования. Единицы измерения содержания и выбросов формальдегида: мг / 100 г, мг / л, мг / м ³ и мг / м ^2. ч, что соответствует различным методам испытаний. мг / 100 г — это единица содержания формальдегида в древесных плитах, которая относится к содержанию формальдегида на 100 г деревянных панелей с использованием метода испытания на перфорацию. Три единицы мг / л, мг / м ³ и мг / м ² · ч используются для выделения формальдегида. Единица мг / л соответствует методу эксикатора, который зависит от температуры, площади образца, объема осушителя, объема воды и времени сбора. Единица мг / м ³ соответствует камерному методу, связанному с температурой и влажностью, скоростью загрузки, вентиляцией, отверстием для отбора проб, размером образца, временем отбора проб и методами анализа.Единица мг / м ² · ч соответствует методу газового анализа с использованием измеренной концентрации формальдегида, времени экстракции и площади экспонирования образца для расчета количества выделяемого формальдегида и в настоящее время используется реже.

В существующих стандартах по ограничению выбросов формальдегида для древесных плит различные типы древесных плит обычно испытываются разными методами. В разных странах есть свои ограничения, связанные с условиями тестирования, различиями между методами предварительной обработки и типом панели.Результаты испытаний на содержание формальдегида в древесных плитах сильно различаются, поэтому сложно определить, подходит ли он для других национальных стандартов, используя собственные методы испытаний. Некоторые ученые проанализировали и сравнили различные методы тестирования, подбирая общую формулу, используя индукцию данных для преобразования данных различных методов тестирования. Ли и Ван [9] рассчитали наклон кривой эмиссии формальдегида с помощью односторонней регрессии и проанализировали взаимосвязь результатов испытаний между перфорацией и эксикатором.Yu et al. [10] пришли к выводу, что существует определенная линейная корреляция между выбросом формальдегида из МДФ перфорации и газовым анализом. Gu et al. [11] проанализировали корреляцию различных методов испытаний на выброс формальдегида из древесных плит и преобразовали ограниченное значение, соответствующее различным методам США ASTMD6007-2002, европейского EN717-2: 1994, японского JISA1460-2001 и китайского GB18580-2001. с помощью уравнения регрессии, которое дает предприятиям справочную информацию по контролю выбросов формальдегида при экспорте продукции в разные страны.При исследовании корреляции между различными методами испытаний на выброс формальдегида из древесных плит можно использовать один метод для прогнозирования результатов других методов испытаний, которые служат ориентиром для предприятия, производящего древесные плиты, для контроля качества.

3. Факторы, влияющие на эмиссию формальдегида из древесных плит

Эмиссия формальдегида из древесных плит может быть сложным процессом, на который могут влиять (1) факторы, связанные с материалами, такими как тип панели, древесина виды, клей и покрытие, используемые для панелей; (2) факторы, связанные с окружающей средой, такие как температура, влажность, скорость воздуха и скорость воздухообмена; (3) факторы, связанные с лечением; и (4) факторы, связанные с процессом изготовления панели, такие как содержание смолы, влажность панели и другие.

3.1. Факторы, относящиеся к материалам

На выбросы формальдегида древесными плитами влияют физические и химические свойства продуктов, такие как содержание формальдегида, структура компонентов, химический состав, плотность, толщина и свойства поверхности материала.

Основным источником формальдегида является клей. Например, молярное соотношение (формальдегид к мочевине, f / u) для мочевиноформальдегидного клея является важным фактором, влияющим на выделение формальдегида.Чем выше молярное соотношение (f / u), тем больше эмиссия формальдегида. Смола с более высоким молярным соотношением будет иметь больше свободного формальдегида, из которого образуется большое количество мономера формальдегида после уплотнения панелей. Однако уменьшение молярного отношения f / u снизит вязкость смолы, и это может повлиять на активность и стабильность клея. Содержание смолы значительно влияет на выделение формальдегида древесными плитами, особенно во время горячего прессования.Он [12] обнаружил, что содержание формальдегида в клее является основным фактором, влияющим на выделение формальдегида древесными панелями. Была получена корреляция между эмиссией формальдегида клея и коэффициентом эмиссии формальдегида древесной панели. То есть, чем выше содержание формальдегида в клее, тем выше уровень выделения формальдегида из древесных плит, и между ними существует хорошая линейная зависимость.

Химический состав древесины будет меняться во время резки, сушки, горячего прессования и других видов обработки древесных плит, что может повлиять на выброс формальдегида древесными плитами.Как правило, эмиссия формальдегида ПБ, изготовленного из древесины с низкой плотностью, выше, чем у ПБ, изготовленного из пород с высокой плотностью [12].

В MDF используется больше клея, чем в PB, что приводит к более высокому исходному выделению формальдегида в MDF, чем в PB. Ли [13] проверил количество выбросов летучих органических соединений (ЛОС) и их состав для шести видов коммерческих древесных плит в течение 28 дней. Было обнаружено, что уровень эмиссии формальдегида от высокого до низкого был у ДВП высокой плотности, ДВП средней плотности, ПБ, фанеры, фанеры МДФ и ориентированно-стружечных плит (OSB).

Для прессованных панелей на внутренних слоях происходит меньшее отверждение смолы, чем на внешних слоях из-за более низкой температуры, более высокого содержания влаги и более низкого значения pH, что облегчает образование формальдегида путем гидролиза, и большего количества выброса свободного формальдегида происходит из сердцевины панели. Kim et al. [14] обнаружили, что количество формальдегида, высвобожденного из края PB, было значительно выше, чем из MDF, из-за большей пористости PB.Wang et al. [15] проанализировали факторы, влияющие на выброс формальдегида из ПБ, и пришли к выводу, что параметры горячего прессования и факторы окружающей среды оказывают значительное влияние на выброс формальдегида. Чем выше влажность сырья, тем больше выделяется формальдегид. Более высокая температура или более продолжительное время горячего прессования уменьшат количество выделяемого формальдегида, но увеличат стоимость. Обычно эмиссия формальдегида у более толстой панели ниже, чем у более тонкой из-за большего поглощения энергии.

3.2. Факторы, связанные с условиями окружающей среды

Многие ученые изучали влияние факторов окружающей среды на выброс формальдегида деревянными панелями, таких как температура, относительная влажность и скорость вентиляции, и пытались установить различные математические модели и формулы.

3.2.1. Температура окружающей среды

Lin et al. [16] обнаружили, что скорость выделения формальдегида и его концентрация увеличиваются в 1,5–12,9 раза при повышении температуры с 15 ° C до 30 ° C.Чи [17] проверил эмиссию формальдегида фанеры, МДФ, блочного картона и ламината при различных температурах и скоростях загрузки, используя небольшую камеру 1 м ³ . Результаты показали, что более высокая температура ускоряет выделение формальдегида. Чем выше температура, тем выше начальная скорость роста и выше конечная концентрация. Было обнаружено, что выделение формальдегида увеличилось бы на 10–30%, если бы температуру повысили на 5 ° C [17]. Температура увеличивает кинетическую энергию и ускоряет скорость диффузии молекул формальдегида.Между тем, высокая температура приводит к разложению клея, что увеличивает выделение формальдегида. Однако эти методы, которые они использовали, не могут оценить выбросы при другой температуре. Следовательно, корреляционное уравнение будет иметь более практическое значение. Согласно исследованиям, проведенным Майерсом [18], влияние температуры на концентрацию формальдегида в помещении показало экспоненциальную зависимость. Коэффициент диффузии (), коэффициент распределения () и начальная выделяемая концентрация () являются тремя ключевыми параметрами, используемыми для прогнозирования выбросов формальдегида.Zhang et al. [19] обнаружили, что на них может сильно влиять температура, коэффициенты распределения () уменьшаются, а коэффициенты диффузии () увеличиваются с повышением температуры, и они разработали формулу для изучения влияния температуры на эксперименты и теоретический анализ, которая следующим образом: где и постоянны для данного адсорбента и адсорбата.

Deng et al. [20] вывели новую корреляцию между и, основываясь на предположении, что молекулярная диффузия является доминирующей.Уравнение выглядит следующим образом: где и — константы для данного адсорбента и адсорбата.

Huang et al. [21] вывели зависимость между температурой и: где, — общая концентрация,, — постоянная. Полученные корреляции (3) количественно устанавливают взаимосвязь между, и для выбросов формальдегида из строительных материалов. Когда параметры и в (3) получены из доступных результатов, полученные корреляции можно использовать для прогнозирования коэффициента выбросов и при других температурах.Это очень полезно для прогнозирования характеристик выбросов загрязняющих веществ при различных температурах.

3.2.2. Влажность

Майерс [18] показал, что чем выше влажность, тем больше выделяется формальдегид. Для панели на деревянной основе была обнаружена линейная зависимость между влажностью и концентрацией формальдегида в испытательной камере. Lin et al. [16] обнаружили, что концентрация и скорость высвобождения формальдегида увеличивались до 32 раз, когда относительная влажность в камере увеличивалась с 50% до 80%.Frihart et al. [22, 23] проверили выбросы формальдегида из ПБ, связанного с мочевиной и формальдегидом (UF-), и обнаружили, что уровень выбросов увеличивается в 6–9 раз при увеличении относительной влажности с 30% до 100%. Parthasarathy et al. [24] проверили постоянную концентрацию формальдегида в камере и обнаружили, что скорость выделения формальдегида увеличивается в 1,8–3,5 раза, когда относительная влажность увеличивается с 50% до 85%, потому что реакция слабого кислого пара в воздухе и свободного олигомера диметилола в UF-смоле может образовываться формальдегид, который может гидролизоваться с высвобождением формальдегида.Следует отметить, что эти исследования в основном были сосредоточены на анализе концентраций формальдегида или уровней выбросов в устойчивых или равновесных условиях, и результаты не могут быть применимы к реальным внутренним помещениям с изменяющимися условиями окружающей среды.

3.2.3. Комбинированные факторы окружающей среды

Li [13] изучал эмиссию формальдегида древесными плитами при различных факторах окружающей среды, таких как температура, относительная влажность и скорость газообмена.Результаты показали, что температура влияет на скорость выделения формальдегида, взаимодействуя с давлением паров соединения внутри панели. Относительная влажность влияет на скорость выделения формальдегида, взаимодействуя с испарением водяного пара внутри панели. Скорость газообмена влияет на скорость выделения формальдегида, взаимодействуя с градиентом концентрации пограничного слоя панели. Следовательно, скорость выделения формальдегида панелью может быть увеличена за счет повышения температуры, относительной влажности и скорости газообмена, особенно на ранней стадии, когда панель используется.

Guo et al. [1] изучали взаимосвязь средней концентрации формальдегида () и потенциальных факторов, таких как температура (), относительная влажность (RH), время, в течение которого окна и двери закрываются перед взятием проб (DC), продолжительность времени с конца украшение для отбора проб (DR) и характеристики источника (). Модель корреляции средней концентрации формальдегида в помещении с этими пятью факторами (, RH, DC, DR и) была создана на основе 298 образцов (). Связь между пятью доминирующими факторами может быть выражена как

Каждый фактор влияет на концентрацию формальдегида в следующем порядке:, 43.7%; 31,0%; DC, 10,2%; DR 8,0%; и относительная влажность 7,0%. В частности, метеорологические условия (т.е. относительная влажность плюс) составляли 50,7%. Коэффициент и RH, RTH, был предложен для описания их совместного влияния на выброс формальдегида, который также имел линейную зависимость () с высвобождением формальдегида при испытании в имитационной камере. Кроме того, эксперименты подтвердили, что это синергетическое действие, поскольку относительная влажность ускоряет высвобождение формальдегида, и что это важный фактор, влияющий на загрязнение формальдегидом в помещении.Эти достижения могут привести к эталонным значениям мер по эффективному снижению загрязнения помещений формальдегидом.

Ян и др. [25] изучали комбинированное влияние относительной влажности и температуры на эмиссию формальдегида и эмиссионные параметры (,, и), и была разработана теоретическая модель эмиссионных параметров,, _, относительной влажности и температуры. где,,,, и. где,, и. где,,, и.

Эти модели могут прогнозировать параметры выбросов формальдегида при различных температурах и влажности, а также прогнозировать равновесную концентрацию формальдегида в воздухе, комбинируя их с моделью выделения панелей.

Huang et al. [26] разработали теоретическую модель (8) с использованием температуры, влажности и скорости изменения воздуха в помещении для прогнозирования концентрации формальдегида в помещении. где — концентрация формальдегида в окружающей среде ( мк г / м ³ ), — концентрация формальдегида в помещении, — объем помещения (м ³ ), — интенсивность вентиляции помещения (м ³ / h), — скорость выброса формальдегида из внутренних источников на единицу площади ( мкм г / (м ² · ч), — площадь выброса источников (м ² ), — скорость адсорбции внутреннего опускается ( мкм г / ч), — время эмиссии (ч).

Анализ с использованием этого уравнения показал, что концентрации формальдегида в помещениях на севере Китая были в 4,0 раза выше, чем на юге Китая. На этот результат косвенно повлияла политика Китая в области отопления и стандарты энергоэффективности зданий.

Приведенные выше исследования показывают, что чем выше температура и влажность, тем лучше вентиляция и тем больше выделяется формальдегид. Таким образом, во время внутренней отделки повышение температуры, влажности и скорости воздухообмена может ускорить выделение формальдегида.

3.3. Обработка деревянных панелей с выделением формальдегида

3.3.1. Метод поверхностного уплотнения

Для большинства изделий из древесных плит, таких как ПБ или МДФ, поверхностные покрытия обычно используются в целях украшения, что может эффективно снизить выбросы формальдегида.

Barghoor [27] сравнил эмиссию формальдегида древесных панелей с различными методами поверхностного перекрытия с использованием испытательной камеры, и результаты суммированы в таблице 2.

Методы уплотнения Концентрация формальдегида (ppm) Подложка, без герметичного края 1.20 Шпон, герметичный край 0,81 Тонкий деревянный шпон, герметичный край 0,10 Элемент, декорированный меламином, без герметичного края 0,10 Элемент, декорированный меламином, герметичный край 0,02 Панель из полиэфирной краски, без герметичного края 0,09 Панель из полиэфирной краски, герметичный край 0,02 Панель с покрытием SH, герметичный край 0.08 Клейкая пленка, герметичный край 0,03

Барри и Корно [28] оценили эффективность 10 различных методов обработки поверхности в качестве барьеров для эмиссии формальдегида и общих летучих органических соединений. (TVOC). К ним относятся краска, УФ-верхнее покрытие, акриловое верхнее покрытие, система виниловой смолы (этил-винилацетат), фенольная насыщенная пленка, пропитанная меламином бумага, многократный (3) мокрый процесс верхнего покрытия, система фольгированной смолы (поливинилацетат) и порошковое покрытие.В экспериментах использовались три изделия из МДФ и четыре изделия из полибутилена без отделки от разных производителей. Результаты показали, что эпоксидные порошковые покрытия, использованные для отделки образцов МДФ, показали наилучшие результаты, достигнув 99 +% сокращения выбросов формальдегида и до 94% сокращения выбросов летучих органических соединений (обозначено как 99 +% / 94%). Это сравнивалось со снижением на 89% / 85% для УФ-краски и 11% (27% -ное увеличение) для акриловой краски на МДФ. Многократная (3) влажная обработка верхнего покрытия показала снижение выбросов формальдегида на 28%, но увеличение выбросов летучих органических соединений, что позволяет предположить, что покрытие может иметь высокое содержание растворителя.Соответствующие сокращения выбросов формальдегида / летучих органических соединений для ламинатов составили 99% / 88% для ламинатов из фенольной бумаги, 99% / 66% для винила, 93% / 85% для меламиновой бумаги весом 80 г и 73% / 75% для ламината 60. г фольги на ПБ. Эти очень ограниченные данные позволяют предположить, что некоторые виды обработки являются очень эффективными барьерами для эмиссии формальдегида и TVOC при нанесении на ПБ и МДФ, хотя эпоксидные порошки обычно наносятся только на МДФ.

Chen et al. [29] изучали влияние различной отделки поверхности PB на снижение летучих органических соединений и эмиссии формальдегида.Эти отделочные материалы и покрытия включают древесный шпон, бумагу с полипропиленовой пленкой, пропитанную меламином бумагу низкого давления (80 г, 120 г), полиуретановые покрытия на водной основе и полипропиленовые покрытия на водной основе. Результаты эксперимента показали, что концентрации формальдегида и TVOC были разными для обработки поверхности. Среди этих отделочных материалов и покрытий полипропиленовая пленочная бумага была лучшим барьером для TVOC и формальдегида, что снизило содержание TVOC на 84,18% и 71,43% формальдегида, в то время как концентрации TVOC в покрытиях на водной основе с высоким содержанием VOC были выше, чем у необработанного PB. .Двадцать один вид ЛОС был идентифицирован из необработанного ПБ и 15 видов ЛОС из ПБ с облицовкой методом ГХ-МС, а содержание ЛОС в ПБ с облицовкой было более чем на 50% ниже, чем в ПБ с облицовкой. Летучие органические соединения из незаконченных досок.

Park et al. [30] провели исследование, чтобы понять влияние материалов для ламинирования поверхности на выделение формальдегида из ПБ и МДФ с уплотнением кромок или без него, используя метод 24-часового эксикатора. Для PB герметизация кромок может снизить выброс формальдегида на 37.4% для ламината низкого давления (LPL) и 80,7% для ламинирования полипропиленовой (PP) пленкой. Ламинированный МДФ с герметизированными краями также показал снижение эмиссии до 57,8% и 54,3%, с пленкой из поливинилхлорида (ПВХ), склеенной клеем на основе растворителя, или с покрытием, отвержденным ультрафиолетовым излучением. соответственно. Однако образцы МДФ с покрытием показали увеличение эмиссии на 5,3%, когда их края были герметизированы, что указывает на образование формальдегида в качестве растворителя, используемого для покрытия. Таким образом, тип материалов для ламинирования деревянных панелей имеет большое влияние на выделение формальдегида.

3.3.2. Метод уплотнения кромок

Большое количество экспериментов показывает, что основным каналом выброса формальдегида является боковая поверхность, которая, как правило, по крайней мере в два раза больше, чем поверхность. Таким образом, герметизация кромок может эффективно снизить выделение формальдегида при использовании древесных панелей при изготовлении декоративных компонентов и деталей мебели. Kim et al. [14] проверили выбросы формальдегида из ПБ и МДФ с помощью эксикатора в соответствии с Японским промышленным стандартом (JIS A 1460), и края каждого образца были герметизированы парафиновой пленкой, полиэтиленовым воском или алюминиевой фольгой; результаты показали, что разница между методами герметизации кромок была намного меньше, чем у незапечатанных образцов.

Уплотнение кромок может только снизить скорость выделения формальдегида, в то время как общее содержание формальдегида в картоне остается неизменным. Однако преимущество герметизации кромок заключается в том, что в течение определенного периода времени выделяется формальдегид, так что влияние формальдегида на здоровье человека значительно снижается.

3.4. Структура изделий из деревянных панелей по выбросам формальдегида

Компоненты мебели и отделки, изготовленные из деревянных панелей, обычно собираются с помощью оборудования, из которого на панелях делается много предварительно просверленных отверстий и вырезов.Количество отверстий на боковых панелях мебели обычно от десятков до сотен. Многие отверстия находятся глубоко в центре панели. Из этих структурных отверстий и выемок выходит большее количество формальдегида, поскольку промежуточный слой древесных плит обычно имеет более высокую способность выделять формальдегид, чем поверхностный слой. Следовательно, он не сможет полностью отразить фактический уровень выбросов формальдегида, если при испытании на выброс формальдегида из древесных плит не будет учитываться влияние этих факторов.Один из эффективных способов уменьшить выделение формальдегида — использовать разумную структуру соединения, чтобы минимизировать количество отверстий на панелях при практическом применении панелей на древесной основе.

3.5. Актуальность эмиссии формальдегида и коэффициента нагрузки древесных плит

Эмиссия формальдегида древесных плит связана не только с содержанием формальдегида и факторами окружающей среды, но также с обработкой поверхности древесных панелей и структурными процессами .В последние годы люди уделяют больше внимания механизму выделения формальдегида из древесных плит и факторам окружающей среды и предлагают некоторые целевые меры по сокращению выбросов формальдегида. Однако в существующих технических условиях производства деревянных панелей, даже если панель соответствует действующим национальным или международным стандартам, в определенном внутреннем пространстве все равно будет происходить накопление выбросов, что приведет к тому, что концентрация формальдегида в помещении превысит предельное значение. стандартов качества воздуха в помещениях.Следовательно, при разработке нормативов предельного содержания формальдегида следует также учитывать количество древесных плит (т.е. коэффициент загрузки). Так называемый коэффициент загрузки относится к соотношению общей площади поверхности деревянных панелей, подвергающихся воздействию воздуха, и объема внутреннего пространства, (=) м ² / м ³ .

Исследования, проведенные Andersen et al. [31] обнаружили, что с увеличением коэффициента загрузки концентрация формальдегида в помещении на кубический метр пространства значительно возрастает.Поэтому при оформлении внутренней отделки необходимо учитывать количество древесных плит. Используя 1 или 10 листов деревянных панелей в одном помещении, концентрация формальдегида в помещении будет совершенно иной.

Согласно Ли [13], концентрация ЛОС в камере будет увеличиваться с увеличением степени загрузки, но концентрация в камере не пропорциональна степени загрузки; скорость высвобождения при высокой степени загрузки будет ниже, чем значение низкой степени загрузки, умноженное на соответствующее кратное, потому что высокая степень загрузки увеличивает концентрацию в камере, а градиент концентрации пограничного слоя уменьшается, что препятствует высвобождению формальдегида из панели.Чи [17] обнаружил, что увеличение коэффициента загрузки может снизить выброс формальдегида на единицу объема панели.

В настоящее время из стандартов выброса формальдегида во всех странах установлены только стандарты США (ANSI) на основе определенного коэффициента загрузки, чтобы ограничить выброс формальдегида древесными плитами.

Повышение температуры и скорости загрузки приведет к увеличению содержания формальдегида в помещении. Температура будет способствовать выделению формальдегида из панели, а коэффициент загрузки увеличит источник выделения.Таким образом, при проектировании отделки и мебели необходимо не только выбрать качественные древесные плиты в качестве сырья, но и продумать, как правильно контролировать количество древесных панелей под влиянием различных факторов окружающей среды.

4. Выводы и обсуждение

Обзор обеспечивает основу для улучшения дизайна интерьера и дизайна мебели путем обоснованного определения количественного показателя степени загрузки деревянных панелей в конкретном пространстве, что может обеспечить техническую поддержку дизайн внутреннего убранства и переход от пассивного мониторинга и управления после завершения проекта к активному прогнозированию уровня загрязнения воздуха в помещении на этапе проектирования, в конечном итоге для управления дизайном и контроля количества деревянных панелей для оптимизации качества воздуха в помещении.Основываясь на фактическом проекте дизайна интерьера, возьмите жилое внутреннее пространство в качестве образца и деревянную панель в качестве объекта исследования, проанализировав влияющие факторы эмиссии формальдегида из деревянной панели и проведя ортогональный эксперимент и множественный регрессионный анализ экспериментальные данные для создания модели эмиссии формальдегида и скорости нагрузки для определения количественного показателя древесной панели в конкретном пространстве. В то же время с помощью технологии компьютерного моделирования программное обеспечение Airpak можно использовать для моделирования распределения газообразного формальдегида в помещении и создания модели прогнозирования концентрации формальдегида в помещении, которая может прогнозировать концентрацию формальдегида в помещении на основе объема помещения, температуры и влажности. состояние вентиляции и открытая площадь деревянной панели, чтобы затем определить условия концентрации формальдегида в помещении для соответствия стандартам и проверить выполнимость результатов моделирования для конкретного проекта.