Люксметр ю 116 инструкция: Инструкция по эксплуатации люксметра — Сам электрик

Люксметр Ю 116 Инструкция По Эксплуатации

2019-02-24

Ю-117 люксметр. Инструкция по эксплуатации. Эти коэффициенты для люксметров типа Ю-116, Ю.

1. Люксметр Ю 116 Инструкция По Эксплуатации

ЛЮКСМЕТР Ю 116 Техническое описание и инструкция по эксплуатации НАЗНАЧЕНИЕ Люксметр Ю116 предназначен, дли измерения освещенности, соз­даваемой лампами накаливания и естественным светом, источники которого расположены произвольно относительно светоприемника люксметра. Переносной фотоэлектрический люксметр Ю116 общепромышленно­го назначения применяется для контроля освещенности в промыш­ленности, в сельском хозяйстве, на транспорте и других отрас­лях народного хозяйства, а также для исследований, проводимых в научных, конструкторских и проектных организациях. Люксметр предназначен для эксплуатация при температуре окру­жающего воздуха от минус 10 до плюс 35°С и относительной влаж­ности до 80% при (20+5) °С.

УСТРОЙСТВО И РАБОТА ЛККСМЕТРА Люксметр состоит из измерителя люксметра и отдельного фотоэлемента с насадками.

На передней панели измерителя имеются кнопки переключателя и табличка со схемой, связывающей действие кнопок и используе­мых насадок с диапазонами измерений. Прибор магнитоэлектрической системы имеет две шкалы: 0-100 и 0-30. На каждой шкале точками отмечено начало диапазона из­мерений: на шкале 0-100 точка находится над отметкой 20, на шкале 0-30 точка находится над отметкой 5. Прибор имеет коррек­тор для установки стрелки в нулевое положение. Белый телевизор самсунг. На боковой стенке корпуса измерителя расположена вилка для присоединения селенового фотоэлемента. Селеновый фотоэлемент находится в пластмассовом корпусе и присоединяется к измерителю шнуром с розеткой, обеспечиваю­щей правильную полярность соединения.

Длина шнура — 1,5 m. Светочувствительная поверхность фотоэлемента составляет около 30 sm 2. Для уменьшения косинусной погрешности применяется насадка на фотоэлемент, состоящая из полусферы, выполненной из белой светорассеивающей пластмассы, и непрозрачного пластмассового кольца, имеющего сложный профиль.

【Практические работы по охране труда в учебных заведениях. Световой режим в учебных помещениях — люксметр Ю-116 】

войти в систему

Добро пожаловат!Войдите в свой аккаунт

Ваше имя пользователя

Ваш пароль

Вы забыли свой пароль?

восстановление пароля

Восстановите свой пароль

Ваш адрес электронной почты

15.06.2022

Студентам

Некогда читать? Сохрани:

Люксметр Ю—116

Люксметр Ю-116 (рис. 11.1.1) состоит из измерителя, люксметра, 1 и отдельного фотоэлемента 5 с насадками 6 и 7. В качестве фотоэлектрического датчика используется селеновый фотоэлемент. На передней панели измерителя имеются кнопки переключателя 3 и табличка 2 со схемой, связывающей действие кнопок и используемых насадок. Прибор имеет две шкалы (0—100 и 0—30), на которых, точками отмечено начало диапазона измерений. На шкале 0—100 точка находится под отметкой 20, на шкале 0—30 — над отметкой 5. Прибор имеет корректор 4 для установки стрелки в нулевое положение. На боковой стенке корпуса измерителя расположена вилка 8 для присоединения фотоэлементов.

Рис. 11.1.1. Люксметр Ю-116

Для уменьшения косинусной погрешности, возникающей при падении световых лучей на освещаемую поверхность под углом, применяется насадка 7 на фотоэлемент, выполненная в виде полусферы из белой светорассеивающей пластмассы. Эта насадка применяется не самостоятельно, а совместно с одной, из трех других насадок 6, обозначенных буквами М, Р, Т. Каждая из этих трех насадок совместно с насадкой 7 (К) образует три поглотителя с коэффициентом ослабления, соответственно 10, 100, 1000 и применяется для расширения диапазонов измерений с 5-30 и 20-100 лк до 50-300, 200-1000; 500-3000, 2000-10000; 5000-30000, 20000-100000 лк.

Принцип отсчета значений измерений освещенности состоит в следующем: против нажатой кнопки определяется выбранное с помощью насадок (или без них) наибольшее значение диапазонов измерений. При нажатой правой кнопке, против которой нанесены наибольшие значения диапазонов измерений кратные 10, следует пользоваться шкалой 0-100. При нажатой левой кнопке, против которой нанесены наибольшие значения диапазонов измерений кратные 30, следует пользоваться шкалой 0— 30. Показания прибора умножают на коэффициент пересчета шкалы в зависимости от применяемых насадок.

Примечание. Если величина измеряемой освещенности неизвестна, то измерения производятся с установки на фотоэлемент насадок К и Т. С целью ускорения поиска диапазона измерений, который Соответствует показаниям прибора в пределах 20-100 делений по шкале 0—100 и 5— 30 делений по шкале 0—30, поступают следующим образом: последовательно устанавливают насадки К, Т; К, Р; К, М, и при каждой насадке сначала нажимают правую кнопку, а затем левую.

Если при насадках К, М и нажатой левой кнопке стрелка не доходит до 5 делений по шкале 0-30, измерения производят без насадок, т. е. открытым фотоэлементом.

Общие требования, предъявляемые к освещенности школьных помещений

Каким бы ни было освещение в учебном помещении — естественным, искусственным или совмещенным, — к нему предъявляется ряд общих требований.

1. Достаточность — зависит от размера окон и межоконных проемов, ориентации окон относительно сторон света (предпочтительно на юг и юго-восток), расположения затеняющих объектов, чистоты и качества стекол, количества и мощности источников искусственного освещения.

2. Равномерность — зависит от расположения окон, конфигурации классного помещения, контрастности между окраской стен, оборудования и учебных материалов, типа арматуры светильников (характер абажуров) и их расположения.

3. Отсутствие теней на рабочем месте — зависит от стороны падения света (свет, падающий слева, исключает тени от пишущей правой руки; верхний свет практически бестеневой).

4. Отсутствие слепимости (блесткости) — зависит от наличия поверхностей с высоким коэффициентом отражения (полированная мебель, застекленные шкафы и пр.) и арматуры светильников.

5. Отсутствие перегрева помещения — зависит от наличия и силы прямых солнечных лучей и типа ламп.

Выполнение на практике указанных требований относительно естественного освещения во многом запрограммировано строительными нормами и правилами, т. е. уже заложено в проекте школьного здания. Однако существует ряд факторов, количественно влияющих на уровень естественного освещения.

Основными из этих факторов являются:

1. Световой коэффициент — отношение остекленной площади окон (площадь окон за вычетом оконных переплетов) к площади пола. Понятно, что чем больше Площадь окон, тем выше уровень естественного освещения. Однако значительное увеличение размеров окон ведет к снижению теплоустойчивости здания в зимнее время и к чрезмерной инсоляции весной и осенью. Поэтому норма светового коэффициента для школ равна 1/4-1/5 (в сельских школах и физкультурных залах 1/6).

2. Угол падения света — тот угол, под которым свет падает на рабочее место. Он образован двумя прямыми: одна — из рабочего места к, верхнему краю окна, другая — из рабочего места по горизонтали к окну. Понятно, что таких углов будет ровно столько, сколько рабочих мест в классе, и чем дальше от окна расположено рабочее место, тем этот угол меньше и тем хуже условия освещения. Поэтому угол падения света определяется в наиболее удаленном от окна рабочем месте и норма его — не менее 27°.

3. Угол отверстия — тот угол, под которым видно небо над крышей противоположного здания. Он характеризует влияние затеняющих объектов на уровень естественного освещения и образуется следующими прямыми: одна — из рабочего места к верхнему краю окна, другая — из рабочего места к проекции в окне крыши противостоящего здания. Как и угол падения света, угол отверстия определяется в наиболее удаленном от окна рабочем месте и его норма — не менее 5°.

4. Коэффициент заслонения — отношение высоты противолежащего здания к расстоянию от него до школы. Этот показатель также характеризует влияние затеняющих объектов на величину естественного освещения класса. Его норма — не более 1/2. Показано, что если коэффициент заслонения равен 1/5, затеняющего эффекта практически нет.

Понятно, что повлиять существенным образом на величины показателей, количественно характеризующих уровень естественного освешения. учитель не в состоянии. Тем не менее, некоторые качественные стороны естественного освещения во многом зависят от правильных действий учителя.

Эти действия заключаются в следующем:

1. Следить за чистотой и качеством стекол. Осуществлять мытье окон 3—4 раза в год снаружи и 1—2 раза в месяц изнутри. Кроме того, неровные, волнистые стекла также задерживают свет, поэтому стекла в школьных окнах должны быть высокого качества.

2. Для остекления окон в начальных классах рекомендуется использовать увиолевые стекла, пропускающие ультрафиолетовые лучи.

3. Следить за тем, чтобы светопроемы были свободными. Снижение напряжения механизма аккомодации возможно в том случае, если школьник может время от времени посмотреть в окно, сфокусировать взгляд где-то в бесконечности.

4. Рекомендуется иметь на окнах класса два типа штор: полупрозрачные и непрозрачные. Первые используются в тех случаях, когда нужно снизить уровень инсоляции, вторые — когда используются технические средства обучения; в обычном же состоянии шторы должны быть раздвинуты.

5. Не рекомендуется располагать на окнах цветы — в той или иной степени они загораживают свет.

Партнеры проекта — в помощь студентам

Предоставление практической помощи в написании студентам, работающим над курсовыми, рефератами и дипломными работами. Поисковая помощь, редактирование, корректура, форматирование, проверка на плагиат.

Влияние интенсивности света на физиологические характеристики и экспрессию генов в пути биосинтеза кумарина дягиля даурского

1. Чжан Дж. Дж., Чжу Л., Чжан С., Чжоу Дж. Фотосинтетические характеристики и реакции роста Liriope muscari (Decne. ) L. H. Bailey ( Asparagaceae ), посаженные в тополевых лесах с разной плотностью полога. БМС Экол. 2020;20:25. doi: 10.1186/s12898-020-00294-7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Павловска Б., Жупник М., Шевчик-Таранек Б., Чоч М. Влияние светодиодных источников света на морфогенез и уровни фотосинтетических пигментов у Gerbera jamesonii , выращенных in vitro. Хортик. Окружающая среда. Биотехнолог. 2018;59:115–123. doi: 10.1007/s13580-018-0012-4. [CrossRef] [Google Scholar]

3. Габр А.М.М., Эбрахим Х.С., Эль-Ашри А.А.Е.-Л., Эль-Бахр М.К. Значение условий искусственной среды для биотехнологии растений, роста растений и вторичных метаболитов. ИГИ Глобал; Шоколадный проспект Херши, Пенсильвания, США: 2021. стр. 29.2–319. [Google Scholar]

4. Шин К.С., Мурти Х.Н., Хео Дж.В., Хан Э.Дж., Пэк К.Ю. Влияние качества света на рост и развитие растений Doritaenopsis , культивируемых in vitro. Акта Физиол. Растение. 2008; 30: 339–343. doi: 10.1007/s11738-007-0128-0. [CrossRef] [Google Scholar]

5. Fu X., Chen Y., Mei X., Katsuno T., Kobayashi E., Dong F., Watanabe N., Yang Z. Регуляция образования летучих соединений чая ( Camellia sinensis ) оставляет свет с одной длиной волны. науч. Отчет 2015; 5:16858. doi: 10.1038/srep16858. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Cheng S., Fu X.

, Mei X., Zhou Y., Du B., Watanabe N., Yang Z. Регуляция биосинтеза и эмиссии летучих фенилпропаноидов/бензоидов в цветках петунии × hybrida с помощью нескольких -факторы циркадных часов, света и температуры. Завод Физиол. Биохим. 2016; 107:1–8. doi: 10.1016/j.plaphy.2016.05.026. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Li Y., Kong D., Fu Y., Sussman M.R., Wu H. Влияние факторов развития и окружающей среды на вторичные метаболиты в лекарственных растениях. Завод Физиол. Биохим. 2020;148:80–89. doi: 10.1016/j.plaphy.2020.01.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Deng B., Fang S., Shang X., Fu X., Li Y. Влияние происхождения и тени на производство биомассы и накопление тритерпеноидов у Cyclocarya paliurus . Агрофор. Сист. 2019;93:483–492. doi: 10.1007/s10457-017-0138-x. [CrossRef] [Google Scholar]

9. Гасемзаде А., Джаафар Х.З.Э., Рахмат А., Вахаб П.Э.М., Халим М.Р.А. Влияние различной интенсивности света на общий синтез фенолов и флавоноидов и антиоксидантную активность молодых сортов имбиря (Zingiber officinale Roscoe) Int.

Дж. Мол. науч. 2010; 11:3885–3897. doi: 10.3390/ijms11103885. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Xu Y., Wang G., Cao F., Zhu C., Wang G., El-Kassaby Y.A. Интенсивность освещения влияет на рост и биосинтез флавонолов гинкго ( Ginkgo biloba L.) New For. 2014; 45:765–776. doi: 10.1007/s11056-014-9435-7. [CrossRef] [Google Scholar]

11. Чой И., Лим Х.Х., Сонг Ю.К., Ли Дж.В., Ким Ю.С., Ко И.Г., Ким К.Дж., Шин М.С., Ким К.Х., Ким С.Дж. экстракт корня Анжелика Даурика . Ориентация. фарм. Эксп. Мед. 2008; 7: 527–533. doi: 10.3742/OPEM.2008.7.5.527. [CrossRef] [Google Scholar]

12. Kang S.W., Kim C.Y., Song D.g., Pan CH, Cha K.H., Lee D.-U., Um B.-H. Быстрая идентификация фуранокумаринов в

Angelica dahurica с использованием онлайн-ЖХ-MMR-МС и их ингибирующей активности в отношении оксида азота в клетках RAW 264.7. Фитохим. Анальный. 2010;21:322–327. doi: 10.1002/pca.1202. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Zhao L., Zhang S., Shan C., Shi Y., Wu H., Wu J., Peng D. Сборка транскриптома de novo из Angelica dahurica и характеристика генов пути биосинтеза кумарина. Ген. 2021;791:145713. doi: 10.1016/j.gene.2021.145713. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Окада Р., Абэ Х., Окуяма Т., Нисидоно Ю., Исии Т., Сато Т., Ширако С., Танака К., Икея Ю., Нисидзава М. Сравнение противовоспалительной активности фуранокумаринов из корней дягиля даурского . Биоакт. комп. Здоровье Дис. 2021; 4: 287–300. doi: 10.31989/bchd.v4i12.866. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

15. Ван Т.т., Джин Х., Ли К., Ченг В.М., Ху К.к., Чен С.х., Би К.с. Выделение и одновременное определение соединений кумарина в Radix Angelica dahurica . Хроматография. 2007; 65: 477–481. doi: 10.1365/s10337-007-0185-y. [CrossRef] [Google Scholar]

16. Чжао Х., Фэн Ю.-Л., Ван М., Ван Дж.-Дж., Лю Т., Ю Дж. Анжелика даурская: обзор традиционного использования, Фитохимия и фармакология. Передний. Фармакол. 2022;13:2367. doi: 10.3389/fphar.2022.896637. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Xie Y., Zhao W., Zhou T., Fan G., Wu Y. Эффективная стратегия, основанная на MAE, HPLC-DAD-ESI-MS/MS и 2D-prep-HPLC-DAD для быстрого экстракция, разделение, идентификация и очистка пяти активных компонентов кумарина из Radix angelicae dahuricae. Фитохим. Анальный. 2010;21:473–482. doi: 10.1002/pca.1222. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Piao XL, Park I.H., Baek S.H., Kim HY., Park M.K., Park J.H. Антиоксидантная активность фуранокумаринов, выделенных из Ангелики даурские . Дж. Этнофармакол. 2004; 93: 243–246. doi: 10.1016/j.jep.2004.03.054. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Pang Qq, Li T., Liu Lx, Shi Df, Yao Xs, Li Hb, Yu Y. Систематическое определение противовоспалительных компонентов Cimicifuga dahurica с помощью UPLC-Q /TOF-MS в сочетании с сетевым фармакологическим анализом. Биомед. Хроматогр. 2021;35:5177. doi: 10.1002/bmc.5177. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Dong X.d., Liu Y.n., Zhao Y., Liu A.j., Ji Hy, Yu J. Структурная характеристика водорастворимого полисахарида из Angelica dahurica и ее противоопухолевое действие у мышей с опухолью h32. Междунар. Дж. Биол. макромол. 2021; 193: 219–227. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2021.10.110. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Wang Z., Xiao S., Wang Y., Liu J., Ma H., Wang Y., Tian Y., Hou W. Влияние светового облучения на биосинтез эфирного масла в лекарственном растении Asarum heterotropoides Fr. Шмидт вар. mandshuricum (Максим) Китаг. ПЛОС ОДИН. 2020;15:e0237952. doi: 10.1371/journal.pone.0237952. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Фогт Т. Биосинтез фенилпропаноидов. Мол. Растение. 2010;3:2–20. doi: 10.1093/mp/ssp106. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Ma J., Huang J., Hua S., Zhang Y., Zhang Y., Li T., Dong L., Gao Q., Fu X. этнофармакология, фитохимия и фармакология Angelica Biserrata —Обзор. Дж. Этнофармакол. 2019; 231:152–169. doi: 10.1016/j.jep.2018.10.040. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

24. Вэй В.-Л., Цзэн Р., Гу С.-М., Цюй Ю., Хуан Л.-Ф.

Angelica sinensis в Китае — обзор ботанического профиля, этнофармакологии, фитохимии и химического анализа. Дж. Этнофармакол. 2016; 190:116–141. doi: 10.1016/j.jep.2016.05.023. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Ли Х. Принципы и экспериментальные методы физиологии и биохимии растений. Том 5 Издательство о высшем образовании; Пекин, Китай: 2000. [Google Scholar]

26. Xu L., Yang P., Feng Y., Xu H., Cao Y., Tang Y., Yuan S., Liu X., Ming J. Пространственно-временные данные. Транскриптомный анализ дает представление о развитии двуцветного листочка околоцветника у Лилиум «Крошечный Падхье» Фронт. Растениевод. 2017;8:398. doi: 10.3389/fpls.2017.00398. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Grabherr M.G., Haas B.J., Yassour M., Levin J.Z., Thompson D. A., Amit I., Adiconis X., Fan L., Raychowdhury R. , Цзэн К. и др. Сборка полноразмерного транскриптома из данных RNA-Seq без эталонного генома. Нац. Биотехнолог. 2011; 29: 644–652. doi: 10.1038/nbt.1883. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Smith-Unna R., Boursnell C., Patro R., Hibberd J.M., Kelly S. TransRate: Безреференсная оценка качества транскриптома de novo сборки. Геном Res. 2016; 26:1134–1144. дои: 10.1101/гр.196469.115. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Ли В., Годзик А. Cd-hit: быстрая программа для кластеризации и сравнения больших наборов последовательностей белков или нуклеотидов. Биоинформатика. 2006; 22:1658–1659. doi: 10.1093/биоинформатика/btl158. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Li B., Dewey C.N. RSEM: Точная количественная оценка транскриптов по данным RNA-Seq с эталонным геномом или без него. БМК Биоинформ. 2011;12:323. дои: 10.1186/1471-2105-12-323. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Trapnell C., Williams B.A., Pertea G., Mortazavi A., Kwan G., van Baren M.J., Salzberg S.L., Wold B.J., Pachter L. Сборка и количественный анализ транскриптов с помощью RNA-Seq выявляет неаннотированные транскрипты и переключение изоформ во время дифференцировки клеток. Нац. Биотехнолог. 2010; 28: 511–515. doi: 10.1038/nbt.1621. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Лав М.И., Хубер В., Андерс С. Модерированная оценка изменения кратности и дисперсии для данных секвенирования РНК с помощью DESeq2. Геном биол. 2014;15:550. doi: 10.1186/s13059-014-0550-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Боратин Г.М., Тьерри-Миг Дж., Тьерри-Миг Д., Басби Б., Мэдден Т.Л. Magic-BLAST, точный выравниватель RNA-seq для длинных и коротких прочтений. БМК Биоинформ. 2019;20:405. doi: 10.1186/s12859-019-2996-x. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Ливак К.Дж., Шмиттген Т.Д. Анализ данных относительной экспрессии генов с использованием количественной ПЦР в реальном времени и метода 2(-Delta Delta C(T)) . Методы. 2001; 25: 402–408. doi: 10.1006/meth.2001.1262. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

35. Yang W., Lin Y., Xue Y., Mao M., Zhou X., Hu H., Liu J., Feng L., Zhang H., Luo J., et al. Влияние интенсивности света на окраску и строение химерных листьев Ananas comosus var . прицветник. Фитон Инт. Дж. Эксп. Бот. 2022; 91: 333–348. doi: 10.32604/phyton.2022.016862. [CrossRef] [Google Scholar]

36. Ma X., Song L., Yu W., Hu Y., Liu Y., Wu J., Ying Y. Рост, физиологические и биохимические реакции Camptotheca acuminata рассады к разным световым условиям. Передний. Растениевод. 2015;6:321. дои: 10.3389/fpls.2015.00321. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Бертамини М., Мутучелиан К., Недунчежян Н. Эффект затенения изменяет пигменты листьев и фотосинтетические реакции у ели европейской ( Picea abies L.), выращенной в полевых условиях. Фотосинтетика. 2006; 44: 227–234. doi: 10.1007/s11099-006-0011-z. [CrossRef] [Google Scholar]

38. Ли К. С., Парк В. Г. Физиологическая реакция и показатели роста Parasenecio firmus при различных процедурах затенения. Корейский Дж. Агрик. Для. метеорол. 2012;14:79–88. doi: 10.5532/KJAFM.2012.14.2.079. [CrossRef] [Google Scholar]

39. Альшер Р.Г., Эртюрк Н., Хит Л.С. Роль супероксиддисмутазы (СОД) в контроле окислительного стресса у растений. Дж. Эксп. Бот. 2002;53:1331–1341. doi: 10.1093/jexbot/53.372.1331. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Bowler C., Montagu M.V., Inze D. Супероксиддисмутаза и стрессоустойчивость. Анну. Преподобный Завод Физиол. Завод Мол. биол. 1992; 43:83–116. doi: 10.1146/annurev.pp.43.060192.000503. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

41. Миттлер Р. Окислительный стресс, антиоксиданты и стрессоустойчивость. Тенденции Растениевод. 2002; 7: 405–410. doi: 10.1016/S1360-1385(02)02312-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Zhu H., Li X., Zhai W., Liu Y., Gao Q., Liu J., Ren L., Chen H., Zhu Y. Эффекты влияния слабого освещения на фотосинтетические свойства, активность антиоксидантных ферментов и накопление антоцианов в пак-чой пурпурной ( Brassica campestris ssp. Chinensis Makino) PLoS ONE. 2017;12:e0179305. doi: 10.1371/journal.pone.0179305. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Deng Y., Jia X., Sun X., Liang L., Su J. Сравнение реакций антиоксидантной системы жасмина в различной степени и продолжительность тени. Акта Физиол. Растение. 2018;40:41. doi: 10.1007/s11738-018-2618-7. [CrossRef] [Google Scholar]

44. Liu S.-l., Yang R.-j., Ren B., Wang M.-h., Ma M.-d. Различия в фотосинтетической способности, флуоресценции хлорофилла и антиоксидантной системе между инвазивной Alnus formosana и ее родным сородичем в ответ на разные уровни освещенности. Ботаника. 2016;94:1087–1101. doi: 10.1139/cjb-2016-0026. [CrossRef] [Google Scholar]

45. Gao Z., Khalid M., Jan F., Saeed ur R., Jiang X., Yu X. Влияние светорегуляции и интенсивности на рост, физиологические и биохимические свойства саженцев Aralia elata (микс.). С. Афр. Дж. Бот. 2019;121:456–462. doi: 10.1016/j.sajb.2018.12.008. [CrossRef] [Google Scholar]

46. Морси М.Р., Жув Л., Хаусман Дж.-Ф., Хоффманн Л., Стюарт Дж.М. Изменение окислительного и углеводного обмена при абиотическом стрессе у двух видов риса ( Oryza sativa L.) генотипы, контрастирующие по холодоустойчивости. J. Физиол растений. 2007; 164: 157–167. doi: 10.1016/j.jplph.2005.12.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Хуссейн С., Икбал Н., Рахман Т., Лю Т., Брестик М., Сафдар М.Э., Асгар М.А., Фарук М.У., Шафик И., Али А. , и другие. Влияние тени на динамику углеводов и силу стебля генотипов сои. Окружающая среда. Эксп. Бот. 2019;162:374–382. doi: 10.1016/j.envexpbot.2019.03.011. [CrossRef] [Академия Google]

48. Verheul M. Влияние густоты растений, удаления листьев и интенсивности света на качество томатов и урожайность. Акта Хортик. 2012; 956:365–372. doi: 10.17660/ActaHortic.2012.956.42. [CrossRef] [Google Scholar]

49. Лю Л., Цзо З.Т., Сюй Ф.Р., Ван Ю.З. Исследование реакции качества на факторы окружающей среды и географическая прослеживаемость дикой природы Gentiana rigescens Franch. Передний. Растениевод. 2020;11:1128. doi: 10.3389/fpls.2020.01128. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Чжао Ю., Лю Т., Луо Дж., Чжан К., Сюй С., Хань С., Сюй Дж., Чен М., Чен Ю., Конг Л. Интеграция нисходящего транскриптома и метаболомика Набор данных Peucedanum praeruptorum для исследования генов CYP450 и MDR, участвующих в биосинтезе и транспорте кумаринов. Передний. Растениевод. 2015;6:996. doi: 10.3389/fpls.2015.00996. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Liu W., Zhang Z., Chen S., Ma L., Wang H., Dong R., Wang Y., Liu Z. Глобальный анализ транскриптомного профилирования дает представление о генах, реагирующих на слюну, у люцерны. Отчет о клетках растений 2016; 35: 561–571. дои: 10.1007/s00299-015-1903-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Luo K., Wu F., Zhang D., Dong R., Fan Z., Zhang R., Yan Z., Wang Y., Zhang J. Transcriptomic профилирование Melilotus albus почти изогенных линий, контрастирующих по содержанию кумарина. науч. 2017;7:4577. doi: 10.1038/s41598-017-04111-y. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Полногеномный анализ путей защиты от фенилпропаноидов. Мол. Завод Патол. 2010;11:829–846. doi: 10.1111/j.1364-3703.2010.00648.x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Fraser CM, Chapple C. Путь фенилпропаноида в Arabidopsis . араб. Книга. 2011;9:e0152. doi: 10.1199/таб.0152. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Song Q., Chen S., Wu Y., He Y., Feng J., Yang Z., Lin W., Zheng G. , Li Y., Chen H. Сравнительный транскриптомный анализ реакции генов на различные условия освещения Camellia oleifera Лист с использованием Illumina и секвенирования РНК в режиме реального времени. Леса. 2020;11:91. doi: 10.3390/f11010091. [CrossRef] [Google Scholar]

56. Тургут-Кара Н. Сравнительный филогенетический анализ генов фенилпропаноидного метаболизма бобовых растений. Омики растений. 2015; 8:55–61. [Google Scholar]

57. Делюк Л., Барье Ф.О., Мархив К., Ловержеа В., Десендит А., Ричард Т., Карде Ж.-П., Мерийон Ж.-М., Хамди С.д. Характеристика фактора транскрипции R2R3-MYB виноградной лозы, который регулирует фенилпропаноидный путь. Завод Физиол. 2005;140:499–511. doi: 10.1104/стр.105.067231. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Ван Л., Пан Д., Лян М., Абубакар Ю.С., Ли Дж., Лин Дж., Чен С., Чен В. Регулирование биосинтеза антоцианов в пурпурных листьях чая Цзыцзюань ( Camellia sinensis var. Kitamura) Int. Дж. Мол. науч. 2017;18:833. doi: 10.3390/ijms18040833. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Lin Y., Sun X., Yuan Q., Yan Y. Комбинаторный биосинтез специфических для растений кумаринов в бактериях. Метаб. англ. 2013;18:69–77. doi: 10.1016/j.ymben.2013.04.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Ян С.М., Шим Г.Ю., Ким Б.Г., Ан Дж.Х. Биологический синтез кумаринов в Escherichia coli .